1、1原代心肌细胞培养方法探讨 1邵伟 （山东省千佛山医院 山东济南 250014）周苏宁 邵建华 （山东大学医学院 山东省立医院 山东济南 250021）摘要 探讨培养 Wister 新生大鼠心肌细胞的可靠方法。采用心肌组织块差别消化结合化学纯化的培养方法，通过倒置显微镜、HE 染色、透射电镜、台盼篮、免疫细胞化学，鉴定心肌细胞生长情况及纯度。结果细胞生长迅速、自行搏动，细胞形态完整，细胞内肌丝、线粒体清晰；细胞成活率达 94.6；肌动蛋白（HHF35）经 S-P 法胞浆呈现棕褐色阳性表达，纯度达 96.4。表明该方法培养的心肌细胞生长迅速、活性好、纯度高。关键词 心肌细胞；细胞培养；大鼠Exp
2、lore a method of neonatal rat myocardial cells in cultureZHOU Suning, SHAO Jianhua. Medical college of Shandong university, the peoples hospital of Shandong province, Jinan 250021, ChinaAbstract To explore a reliable method of neonatal rat myocardial cells in culture. The plots of myocardial tissue
3、from neonatal Wister rat were cultured and purified with the method of differential enzyme and 5-Bromodeoxyuridine-treatment. Microscope, transmission electron microscope, HE stains, Trypan blue stains, immunohistochemical test were determined to identification the cell. The results of myocardial ce
4、lls grow rapidity, automaticity, shape intact, the cell of filament and mitochondria clearly. The cell viability was up to 94.6% by Trypan blue stains. The cell purity was up to 96.4% by Actin （HHF35）of Streptavidin peroxidase conjunction method. This method of myocardial cells in culture was grown
5、up rapidity, lively well, high purity. Key words Myocardial Cells; Culture; Rat随着心脏病发病率逐年升高， 有关心肌疾病的研究越来越受到重视，快速、理想的心肌细胞培养是深入研究的前提，为此我们进行了原代心肌细胞培养方法的探讨，并对其进行了一系列实验研究，现报道如下。1 材料与方法1.1 心肌细胞的培养 取 24h 内 Wister 大鼠，在其心脏跳动时将心脏取下，小心剪取心室组织，用冰 PBS 液清洗干净后，将组织反复剪成 0.51mm 3 的小块，加23 滴细胞培养液，用吸管轻轻吹打后分次吸取组织块悬液，将其均匀排
6、在 75ml培养瓶底壁上，轻轻翻转培养瓶，加入含 150ml/L 胎牛血清、0.1mmol/L 5-溴脱氧核苷 (5-Bromodeoxyuridine；Brdu)的高糖 DMEM 3ml 培养液，做好标记置于 37恒温培养箱中 3040min 后，待组织块略干能贴于瓶壁上，再缓慢、轻轻地将培养瓶翻转，使培养液浸泡组织块，继续静止培养。每天小心取出培养瓶置于相差显微镜下进行观察，2h 后就可见组织块周边有细胞伸出，1 天后周围爬满细胞，34 天后多数连接成片，可进行传代，用吸管轻吹组织块使其脱落移出，加入 0.1胰蛋白酶 1ml，放置倒置显微镜下观察，约 35min 后部分细胞呈圆形，在瓶上做
7、好标1山东省自然科学基金资助项目（No.Q99C03）2记，弃去胰蛋白酶液加入含有 0.1mmol/L Brdu 培养液 510ml 在标记处反复吹打，计数板计数细胞 5105/ml，根据需要传至培养瓶（板）中培养，多数 34 天后长成致密单层可用于实验。1.2 培养心肌细胞的鉴定1.2.1 心肌细胞形态观察 常规倒置显微镜观察细胞形态变化、心肌细胞搏动情况，并随时用 Leica DMIRB Microsystems 记录（Leica, 德国） ；取培养心肌细胞单层飞片行苏木素伊红染色（HE 染色）后，光学显微镜下观察并照片。培养细胞用0.1胰蛋白酶消化后，离心，沉淀固定，送电镜室制片，透射电
8、镜观察并摄片。1.2.2 细胞成活率的测定 取细胞悬液，并作适当稀释 106/ml，按 9:1 加入 0.4台盼篮溶液混匀，显微镜下用计数器计数活细胞和死细胞。1.2.3 鼠抗人肌动蛋白单克隆抗体（HHF35）的检测 采用链霉菌抗生物素蛋白过氧化物酶连接法（Streptavidin peroxidase conjunction method, 简称 S-P 法） 。具体步骤如下：单层细胞飞片清洗后 95酒精固定 30min；PBS 洗 5min3，滴加3H 2O2 室温孵育 10min；蒸馏水冲洗，PBS 浸泡 5min，正常山羊血清工作液封闭，室温孵育 10min；滴加适当比例的一抗工作液，
9、37孵育 4过夜；PBS 冲洗，5min3，滴加生物素标记二抗工作液，室温孵育 20min；PBS 冲洗，5min3，滴加辣根酶标记链霉卵白素工作液，室温孵育 20min；PBS 冲洗，5min3，滴加新鲜配制的 DAB 显色液显色 510min；苏木素复染 57min，1%稀盐酸分化 1min，自来水返蓝；酒精剃度脱水，二甲苯透明，中性树胶封片，显微镜下观察并摄片。2 结果2.1 心肌细胞形态 倒置显微镜下可见传代细胞未贴壁呈圆形，贴壁后生长逐渐呈梭形、多角形，胞核 12 个、呈圆形、具有 12 清晰的核仁，细胞大小均匀，生长迅速，单个细胞自行蠕动，当生长成片后可见呈岛屿状搏动，搏动频率 1
10、30150次/分。培养心肌细胞 HE 染色细胞形态饱满、细胞膜完整；透射电镜观察细胞完整，胞膜皱褶整齐，细胞中肌丝、线粒体清晰、分布均匀，细胞核完整。 （图 13）2.2 心肌细胞成活率测定 计数 500 个细胞，27 个染色阳性，成活率 94.6。2.3 肌动蛋白免疫细胞化学反应镜下观察 肌动蛋白 HHF35 经 S-P 法培养的心肌细胞胞浆呈现深浅不一的棕褐色阳性表达，任选 5 张飞片，分别计数 100 个细胞，阳性细胞达 96.4（图 4） ；而用 PBS 代替一抗其结果均为阴性。3 讨论构成心脏的细胞中约有 80为心肌细胞外，还有主要为成纤维细胞等非心肌细胞，本实验所取组织块尽量细小外
11、，并一定要冲洗干净，放入培养瓶内时培养液不要过多易于贴壁，翻转瓶时间不要过长避免干涸，采用此种方法主要是便于心肌细胞迅速贴壁生长，培养液中加入 Brdu 抑制成纤维细胞 DNA 合成达到抑制增生的目的 1；传代时先吹去组织块，然后依据心肌细胞的特性，快消化、轻消化，可看到细胞形态小的心肌细胞变圆，而细胞形态大的成纤维细胞仍伸展，立即中止消化迅速传代，仍用含有 Brdu 的培养液培养，34 天后细胞形成致密单层即可进行实验。此种方法培养的细胞可能与含有少量成纤维细胞促进心肌细胞贴壁和生长，有研究报道 2成纤维细胞条件培养液有提高心肌细胞贴壁率及搏动率的作用，表明有促进心肌细胞搏动和生长的因子，也
12、提示成纤维细胞与心肌细胞间可能存在着某种信号联系。我们也观察到培养的心肌细胞成片搏动长达 20 多天。心肌细胞搏动表明具有自律性的心肌细胞活性和状态良好；心肌细胞 HE 染色3观察形态和贴壁情况；透射电镜观察可观察心肌细胞的超微结构肌丝和线粒体活性等 3；对台盼蓝摄取反映细胞膜损伤和细胞死亡；肌动蛋白 HHF35 免疫细胞化学反映在细胞浆中阳性表达，可间接反映心肌细胞纯度。通过反复实验我们体会到：要选择 24h 内的新生鼠，而以 12h 内培养效果最佳。严格无菌操作，打开胸腔后迅速摘取跳动的心脏，操作要熟练快捷。细胞贴壁生长成致密单层后尽早进行实验，否则会降低心肌细胞的纯度，不利于对单纯心肌细
13、胞的研究。传代消化时胰蛋白酶浓度不要过高，时间不要过长，最好在显微镜下观察，以免较牢贴壁的非心肌细胞浮起。选用飞片要薄，要紧贴培养瓶（板）不要留有气泡，可滴加少许培养液后再放置飞片。要注意培养液的稳定性，适量的血清浓度，适宜的 pH。只有这样才能培养出生长迅速、纯度高、活性好的心肌细胞。44 参考文献1. Karliner JS, Honbo N, Epstein CJ, et al. Neonatal mouse cardiac myocytes exhibit cardioprotection induced by hypoxic and pharmacologic preconditio
14、ning and by transgenic overexpression of human Cu/Zn superoxide dismutase. J Mol Cell Cardiol, 2000 Oct; 32(10):1779-86. 2. Suzuki T, Tsuruda A, Katoh S, et al. Purification of endothelin from a conditioned medium of cardiac fibroblastic cells using beating rate assay of myocytes cultured in a serum
15、-free medium. J Mol Cell Cardiol. 1997 Aug; 29(8):2087-93. 3. Rohr S, Scholly DM, Kleber AG. Patterned growth of neonatal rat heart cells in culture: morphological and electrophysiological characterization. Circ Res, 1991, 68:114-130.图 1 第二代 3d 心肌细胞（10） 图 2 心肌细胞 HE 染色（40）图 3 心肌细胞透射电镜（20000） 图 4 心肌细胞 Actin-HHF35（20）
