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RT-PCR详细图文解析.docx

上传人:dcs1276 文档编号:8140755 上传时间:2019-06-10 格式:DOCX 页数:10 大小:462.62KB
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资源描述

1、一、实时荧光定量 PCR 原理(一)定义:在 PCR 反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR 进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法 。(二)实时原理1、常规 PCR 技术:对 PCR 扩增反应的终点产物进行定量和定性分析无法对起始模板准确定量,无法对扩增反应实时检测。2、实时定量 PCR 技术:利用荧光信号的变化实时检测 PCR 扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过Ct 值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析3、如何对起始模板定量?通过 Ct 值和标准曲线对起始模板进行定量分析.4、几个概念:(1)扩增曲线 :(2) 荧光阈值:(3)Ct 值: CT

2、值的重现性:5、定量原理:理想的 PCR 反应: X=X0*2n非理想的 PCR 反应: X=X0 (1+Ex)nn:扩增反应的循环次数X:第 n 次循环后的产物量X0:初始模板量Ex:扩增效率5、标准曲线6、绝对定量1)确定未知样品的 C(t)值2)通过标准曲线由未知样品的 C(t)值推算出其初始量7、DNA 的荧光标记:二、实时荧光定量 PCR 的几种方法介绍方法一:SYBR Green 法(一)工作原理1、SYBR Green 能结合到双链 DNA 的小沟部位2、SYBR Green 只有和双链 DNA 结合后才发荧光3、变性时,DNA 双链分开,无荧光4、复性和延伸时,形成双链 DNA

3、, SYBR Green 发荧光,在此阶段采集荧光信号。PCR 反应体系的建立及优化:1、SYBR Green 使用浓度:太高抑制 Taq 酶活性,太低,荧光信号太弱,不易检测2 、Primer:引物的特异性高,否则扩增有杂带,定量不准3 、MgCl2 的浓度:可以降低到 1.5mM,以减少非特异性产物4 、反应 Buffer 体系的优化5 、反应温度和时间参数 :由酶和引物决定6、其他与常规 PCR 相同(二)应用范围1、起始模板的测定;2 、 基因型的分析;3 、 融解曲线分析:可以优化 PCR 反应的条件,对常规 PCR 有指导意义,如对primer 的评价;可以区分单一引物、引物二聚体

4、、变异产物、多种产物。(三)优点及缺点优点:对 DNA 模板没有选择性;适用于任何 DNA; 使用方便;不必设计复杂探针;非常灵敏; 便宜。缺点:容易与非特异性双链 DNA 结合,产生假阳性;但可以通过融解曲线的分析,优化反应条件; 对引物特异性要求较高。方法二:TaqMan-水解型杂交探针*5端标记有报告基团(Reporter, R) ,如 FAM、VIC 等 *3 端标记有荧光淬灭基团 (Quencher, Q)* 探针完整, R 所发射的荧光能量被 Q 基团吸收 ,无荧光, R 与 Q 分开,发荧光*Taq 酶有 53外切核酸酶活性,可水解探针(一)工作原理注意:每扩增一条 DNA 分子

5、,释放一个荧光信号,可以在循环过程中任一点检测荧光PCR 反应的建立:1、引物、探针的设计:探针 Tm 为 68-70 ,30 bp, 5不能有 G,G 可能会淬灭荧光素,引物尽量靠近探针,扩增片段400 bp,引物 Tm 为 59-602、反应参数的确定:一般为:94 ,10-20S60,30-60S(Taq 酶 53外切核酸酶活性在 60 最高)也可通过温度梯度优化退火温度 72 ,45 S,3、优化引物和探针浓度:获得最小 Ct 值,信号/背景比值的最大值 引物浓度:50-900nM探针浓度:50-250nM4、其他与常规 PCR 相同(二)优缺点优点:对目标序列的高特异性-阴性结果确定设计相对简单-与目标序列某一区域互补重复性比较好缺点:只适合一个特定的目标;委托公司标记,价格较高;不易找到本底低的探针

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