1、植物生理学实验,植物组织渗透势的测定,实验原理 当植物组织细胞内的汁液其周围的某种溶液处于渗透平衡状态，植物细胞内的压力势为零时，细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。这种渗透势相等的溶液为等渗溶液。该溶液的浓度称为等渗浓度。 当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时，细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的溶液浓度。代入公式即可计算其渗透势。,植物组织渗透势的测定,实验器材与试剂 实验仪器 显微镜，载玻片及盖玻片，试管，移液管，培养皿，镊子，刀片 实验试剂 1.00 mol/L 蔗糖溶液，甲烯蓝 实验材料 洋葱鳞茎或紫鸭跖草,植物组织渗透势的测定,实
2、验步骤 用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液（0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L）各 30 mL，分别注入编好号的各培养皿中。 取带有色素的洋葱鳞茎或紫鸭跖草下表皮，迅速分别投入各蔗糖溶液中，使其完全浸入，约510 min。 从 0.6 mol/L 开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上，盖上盖玻片，于低倍显微镜下观察，并记录质壁分离的相对程度。,植物组织渗透势的测定,实验步骤 确定引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度，和不引起质壁分离的最高浓度，细胞的渗透势与两个极限溶液浓度之平均值的渗透势相等。 根据公式计算细胞的渗透势s
3、 = - icRT i 为解离系数，蔗糖为 1；c 为小液滴在其中基本不动的溶液的浓度，单位为 mol/L；R 为摩尔气体常数，R = 0.0083 LMPa/molK；T 为热力学温度，单位 K,植物组织渗透势的测定,实验结果,植物组织水势的测定,实验原理 植物组织的水分状况可用水势来表示。植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势小于某一溶液的水势，则组织吸水，反之组织失水。若两者相等，水分交换保持动态平衡。组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。根据这些参数的变化
4、情况可确定与植物组织等水势的溶液。,植物组织水势的测定,实验器材与试剂 实验仪器 试管，移液管，毛细滴管，青霉素小瓶，打孔器，镊子 实验试剂 1.00 mol/L 蔗糖溶液，甲烯蓝 实验材料 青菜或菠菜叶片,植物组织水势的测定,实验步骤 用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液（0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L）各 10 mL，分别注入编好号的 7 支对照组试管中。 另取 7 个青霉素小瓶对应试管编号，从对照管中分别吸 2 mL 溶液入相同编号的试验组小瓶中。 用打孔器在叶片中部靠近主脉附近打取叶圆片，随机取样，每试验组小瓶中放入 30 片叶
5、圆片，加塞，放置 30 min，其间摇动数次。,植物组织水势的测定,实验步骤 到时间后，用解剖针沾取少许甲烯蓝粉末加入小瓶中，并震荡，此时溶液呈蓝色。 用 7 支毛细滴管从试验组小瓶中依次吸取着色的液体少许，伸入同号对照组溶液的中部，缓慢放出蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向。 根据公式计算叶片细胞的水势w = - icRT i 为解离系数，蔗糖为 1；c 为小液滴在其中基本不动的溶液的浓度，单位为 mol/L；R 为摩尔气体常数，R = 0.0083 LMPa/molK；T 为热力学温度，单位 K,植物组织水势的测定,实验结果,植物组织水势的测定,实验结果 在 0.05、0.1
6、mol/L 溶液中液滴下降，说明叶片细胞水势小于外液水势，细胞吸水，外液密度变大；在 0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L 溶液中液滴上升，说明叶片细胞水势大于外液水势，细胞失水，外液密度变小 在 0.2 mol/L 溶液中液滴基本不动，说明细胞水势与此外液的渗透势相等 实验所测叶片细胞水势 = - 10.20.0083（273+20）= - 0.48638 MPa 实验温度为20,植物的元素缺乏症,实验原理 植物的生长发育，除需要充足的阳光和水分外，还需要矿质元素，否则植物就不能很好地生长发育甚至死亡。应用溶液培养技术，可以观察矿质元素对植物生活的必需性；用溶液培养做植物的营养实验，可
7、以避免土壤里的各种复杂因素。,植物的元素缺乏症,实验器材与试剂 实验仪器 分析天平，培养缸，烧杯，移液管 实验材料 玉米（或番茄、蓖麻、小麦）种子,植物的元素缺乏症,实验器材与试剂 实验试剂 按下表配制贮备液,植物的元素缺乏症,实验步骤 材料准备 种子用漂白粉溶液灭菌 30 min，用无菌水冲洗数次，然后放在洗净的石英砂中发芽，加蒸馏水，等幼苗长出第一真叶时待用。,植物的元素缺乏症,配制缺元素培养液,植物的元素缺乏症,配制时先于棕色瓶中加入 300 mL 蒸馏水，然后加贮备液，最后配成 500 mL，用稀酸、碱调节至 pH 56。 选取大小一致的植株，小心剥去剩余胚乳，用棉花包裹茎部，穿过瓶盖
8、小孔，使根部浸入培养液，将培养瓶移到温室中，注意管理并观察记录植株的生长情况，各种元素缺乏症的症状及出现的部位。,植物的元素缺乏症,实验结果,硝酸还原酶活性的测定,实验原理 硝酸还原酶是植物氮素代谢作用中的关键性酶，与作物吸收和利用氮肥有关。它作用于NO3 使之还原为 NO2 ： NO3 NADH H+ NO2 NAD+ H2O 产生的 NO2 可以从组织内渗透到外界溶液中，并积累在溶液中，测定反应液中 NO2 含量的增加，即表现该酶活性的大小。,硝酸还原酶活性的测定,实验原理 NO2 含量的测定用磺胺（对氨基苯磺酸胺）比色法。在酸性溶液中磺胺与 NO2 形成重氮盐，再与-萘胺偶联形成紫红色的
9、偶氮染料。反应液的酸度大，则增加重氮化作用的速度，但降低偶联作用的速度，颜色比较稳定。增加温度可以增加反应速度，但降低重氮盐的稳定度。所以反应需要在相同条件下进行。这种方法非常灵敏，能测定每毫升含 0.5g 的NaNO2。,硝酸还原酶活性的测定,实验器材与试剂 实验仪器 分光光度计，注射器，温箱，天平，钻孔器，三角烧瓶，移液管，烧杯，试管 实验试剂 0.1 mol/L 磷酸缓冲液（pH7.5），0.2 mol/L KNO3，磺胺试剂，-萘胺试剂，NaNO2 标准溶液 实验材料 蓖麻、向日葵、油菜、小麦或棉花的叶子,硝酸还原酶活性的测定,实验步骤 将新鲜取回的叶片水洗，用吸水纸吸干，然后用钻孔器
10、打叶圆片，用蒸馏水洗涤 23 次，吸干水分，于分析天平上称取等重的叶圆片两份。每份约 0.30.4g（或每份取 50 个圆片），分别置于含下列溶液的烧瓶中： 0.1 mol/L 磷酸缓冲液 5 mL + 蒸馏水 5 mL ； 0.1 mol/L 磷酸缓冲液 5 mL + 0.2 mol/L KNO3 5 mL 。用注射器抽气，至叶圆片沉于溶液中。将烧瓶放入 30 温箱中，避光保温 30 min。,硝酸还原酶活性的测定,实验步骤 分别吸取反应液 1 mL 于试管中，加入磺胺试剂 2 mL 及-萘胺试剂 2 mL，混合摇匀，静置 30 min，用分光光度计（520 nm）进行测定，记下 OD 值，
11、从标准曲线上读出 NO2 含量，再计算酶的活性。,硝酸还原酶活性的测定,实验步骤 用 5g / mL NaNO2母液稀释成 0.5、1、2、3、4g / mL 的梯度浓度的 NaNO2 溶液 。 分别吸取 0.5、1、2、3、4、5g / mL 的NaNO2 1 mL 于试管中，加入磺胺试剂 2 mL 及-萘胺试剂 2 mL，混合摇匀，静置 30 min，用分光光度计（520 nm）进行测定，记下 OD值，以 OD 值为纵坐标， NaNO2 浓度为横坐标，绘制标准曲线。,硝酸还原酶活性的测定,实验结果 标准曲线,注意：比色空白用1 mL 水加同样显色剂同样反应条件标出根据对照反应液和反应液的比
12、色 OD 值从标准曲线上读出的 NaNO2 含量,硝酸还原酶活性的测定,实验结果 酶的活性,单盐毒害及离子拮抗,实验原理 离子间的拮抗现象的本质是复杂的，它可能反映不同离子对原生质亲水胶粒的稳定性、原生质膜的透性，以及对各类酶活性调节等方面的相互制约作用，从而维持机体的正常生理状态。,单盐毒害及离子拮抗,实验器材与试剂 实验仪器 烧杯，纱布，石蜡 实验试剂 0.12 mol/L KCl， 0.06 mol/L CaCl2， 0.12 mol/L NaCl（所用药品均需用分析纯） 实验材料 小麦种子,单盐毒害及离子拮抗,实验步骤 实验前 34 天选择饱满的小麦种子 100 粒浸种，在室温下萌发，
13、待根长 1 cm 时可用作材料。 取 4 个小烧杯，分别加入下列溶液 0.12 mol/L KCl 0.06 mol/L CaCl2 0.12 mol/L NaCl 0.12 mol/L NaCl 100 mL + 0.06 mol/L CaCl2 1 mL + 0.12 mol/L KCl 2.2 mL,单盐毒害及离子拮抗,实验步骤 小烧杯用涂石蜡的纱布盖上。挑选大小相等及根系发育一致的小麦幼苗 16 株，小心种植在纱布盖的孔眼里，使根系接触到溶液，在室温下培养 23 周后，观察幼苗根的生长情况。 培养期间注意补充水分，可更换一次培养液。,单盐毒害及离子拮抗,实验结果 在单盐溶液中小麦幼苗生
14、长受阻，特别是根部出现畸形。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验原理 叶绿体色素是植物吸收太阳光能进行光合作用的重要物质，主要由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素组成。根据它们在有机溶剂中的溶解特性，可用丙酮将它们从叶片中提取出来。并可根据它们在不同有机溶剂中的溶解度不同以及在吸附剂上的吸附能力不同，将它们彼此分离开。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验原理 叶绿素是一种双羧酸的酯，可与碱发生皂化反应，产生的盐能溶于水，可用此法将叶绿素与类胡萝卜素分开。 叶绿素在光照下可产生暗红色的荧光。 叶绿素中的镁可被 H+ 取代而生成褐色的去镁叶绿素；加入铜盐作用，后者则成为绿色的铜代
15、叶绿素。铜代叶绿素很稳定，在光下不易破坏，故常用此法制作绿色植物的浸渍标本。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验器材与试剂 实验仪器 大试管，台天平，研钵，量筒，漏斗，橡皮塞，新华滤纸，毛细管，剪刀，分液漏斗，烧杯 实验试剂 丙酮，碳酸钙， 石英砂，无水硫酸钠，四氯化碳，乙醚，甲醇，氢氧化钾，盐酸，醋酸铜 实验材料 新鲜菠菜叶片,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验步骤 叶绿体色素的提取分离 称取新鲜叶片 2 g，放入研钵中加丙酮 5 mL，少许碳酸钙和石英砂，研磨成均浆，再加丙酮 10 mL，以漏斗过滤之，即为色素提取液。 把展层用的滤纸剪成 2 cm 20 cm 的纸条，将其
16、一端剪去两侧，中间留一长约 1.5 cm，宽约 0.5 cm 的窄条。 用毛细管吸取叶绿素溶液点于窄条的上方，注意一次所点溶液不可过多，风干后再点，重复多次。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验步骤 叶绿体色素的提取分离 在大试管中加入四氯化碳 35 mL 及少许无水硫酸钠。然后将滤纸条固定于软木塞上，插入试管内，使窄条浸入溶剂中（色素点要略高于液面），盖紧软木塞，直立于阴暗处进行层析。待四种色素带清晰展开后，取出滤纸条，稍干后用铅笔勾出色素带边缘。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验步骤 叶绿体色素的理化性质 叶绿素的荧光现象 取上述色素提取液少许于试管中，分别在反射光和透射
17、光一侧观察提取液的颜色。 铜代反应 取上述色素提取液少许于试管中，1 滴 1 滴加浓盐酸，直至溶液出现褐绿色。然后加醋酸铜晶体少许，慢慢加热溶液，则又产生鲜亮的绿色。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验步骤 叶绿体色素的理化性质 黄色素与绿色素的分离 取上述色素提取液 10 mL，加到盛有 20 mL 乙醚的分液漏斗中，摇动分液漏斗，并沿漏斗边缘加入 30 mL 蒸馏水，轻轻摇动分液漏斗，静止片刻，溶液即分为两层。色素已转入上层乙醚中，弃去下层丙酮和水，再用蒸馏水冲洗乙醚溶液 12 次。然后加入 5 mL 30% KOH甲醇溶液，用力摇动分液漏斗，静置约 10 min，再加蒸馏水约 1
18、0 mL，摇动后静置，则得到黄色素层和绿色素层。,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验结果 叶绿体色素的提取分离 滤纸条自上而下的色素带分别是橙色的胡萝卜素黄色的叶黄素蓝绿色的叶绿素a黄绿色的叶绿素b,叶绿体色素的提取分离及理化性质的鉴定,实验结果 叶绿体色素的理化性质 叶绿素的荧光现象 铜代反应 黄色素与绿色素的分离,叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量的测定,实验原理 叶绿素和类胡萝卜素都有光学特性，表现出一定的吸收光谱，可用分光光度计精确测定。,如果混合液中的两个组分，它们的光谱吸收虽然有明显的差异，但吸收曲线彼此有些重叠，可根据 Lambert-Beer 定律，通过代数方法，计
19、算一种组分由于另一种组分存在时对光密度的影响。最后分别得到两种组分的含量。,叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量的测定,实验原理 根据Lambert-Beer定律，最大吸收光谱峰不同的两个组分的混合液，它们的浓度C与光密度OD之间有如下关系：OD1 = Caka1 + C bkb1 OD2 = Caka2 + C bkb2Ca为组分a的浓度（gL1），Cb为组分b的浓度（gL1）；OD1为在波长1（即组分a的最大吸收峰波长）时，混合液的光密度值，OD2为在波长2（即组分b的最大吸收峰波长）时，混合液的光密度值；ka1和ka2分别为组分a的比吸收系数， kb1和kb2分别为组分b的比吸收系数,
20、叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量的测定,实验原理 叶绿素a和b的80%丙酮溶液的比吸收系数将数据代入上式经整理后，并把浓度单位改为mg/L Ca = 12.7 OD663 2.69 OD645 Cb = 22.9 OD663 4.68 OD645 CT = Ca + Cb = 8.02 OD663 20.21 OD645,叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量的测定,实验器材与试剂 实验仪器 分光光度计，离心机，台天平，研钵，量筒，剪刀，移液管 实验试剂 丙酮，碳酸钙， 石英砂 实验材料 新鲜菠菜叶片,叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量的测定,实验步骤 称取新鲜叶片 1 g，放入研钵
21、中加丙酮 5 mL，少许碳酸钙和石英砂，研磨成均浆，再加 80 % 丙酮 5 mL，将匀浆转入离心管，并用 80 % 丙酮洗涤研钵，一并转入离心管，离心后去沉淀，上清液用 80 % 丙酮定容至20 mL。 取上述色素提取液 1 mL，加 80 % 丙酮 6 mL 稀释，转入比色杯中，以 80 % 丙酮为对照，在 400500 nm波长区每隔 10 nm，在 500600 nm 波长区每隔 20 nm，在 600700 nm 波长区每隔 10 nm，测定光密度，以绘制吸收光谱。另外测定 645 nm 和 663 nm 处的光密度，以计算叶绿素a和b的含量。,叶绿体色素的吸收光谱及叶绿素a、b含量
22、的测定,实验结果 吸收光谱叶绿素a和b含量计算,离体叶绿体光还原反应 （希尔反应）,实验原理 在低温下以等渗溶液制备完整的叶绿体，将其悬浮于适当的反应介质中，并有氧化剂如 2，6-二氯酚靛酚（简称 DCIP）存在时，在光照下会放出O2，同时将染料还原，这就是叶绿体中进行的光还原反应。染料被还原后，颜色从蓝色变为无色，因此可根据溶液 OD 值的变化进行测定，该变化在 4-5 min 内呈线性关系。,离体叶绿体光还原反应 （希尔反应）,实验器材与试剂 实验仪器 离心机，研钵，天平，纱布，试管，100 W 灯泡，722型分光光度计 实验试剂 提取介质 50 mmol/L（pH7.5）Tris-HCl
23、 缓冲液（内含 0.4 mmol/L 蔗糖、10 mmol/L NaCl），1 mmol/L 2，6-DCIP（ 2，6-二氯酚靛酚）溶液（用上述提取介质配制） 实验材料 新鲜菠菜叶片,离体叶绿体光还原反应 （希尔反应）,实验步骤 离体叶绿体的提取 称取 10 g 新鲜菠菜叶片（去除粗叶脉），剪碎，加10 mL 预冷的提取介质（分两次加入）和少许石英砂，冰浴中迅速研磨成匀浆，再加 10 mL 提取介质，用 4 层纱布将匀浆过滤于一离心管中，2500 r / min 离心 3 min，弃沉淀，上清液 4000 r / min 离心 10 min，弃上清。所得沉淀即为完整叶绿体。用 15 mL 提
24、取介质使叶绿体悬浮，置冰浴中备用。,离体叶绿体光还原反应 （希尔反应）,实验步骤 叶绿体光还原反应的测定 取 3 支洁净试管，分别编号，按下表加入试剂：注：2号管加热煮沸，然后加染料，3号管为比色时的空白对照 将试管置于离 100 W 灯光 60 cm 处照光，3 min 后于 620 nm 处测光密度。,离体叶绿体光还原反应 （希尔反应）,实验结果 1号管的 OD620 值 2号管的 OD620 值 说明：,环境因素对光合作用的影响 （叶圆片上浮法）,实验原理 植物光合强度的大小受光强、光质、CO2 浓度、温度等环境条件的影响。利用真空渗入法排除细胞间隙的空气，使叶片沉于水中。由于光合作用放
25、出的 O2 在水中溶解度很小，而在细胞间积累，结果使原来下沉的叶片上浮，根据上浮所需时间长短，即能比较光合作用的强弱。,环境因素对光合作用的影响 （叶圆片上浮法）,实验器材与试剂 实验仪器 打孔器，注射器，100 W 灯泡，小烧杯 实验材料 新鲜青菜叶片,环境因素对光合作用的影响 （叶圆片上浮法）,实验步骤 选取健壮、叶龄相似的成熟叶片，用打孔器避开主脉打取叶圆片共 60 片，置于注射器中，注入水，抽气至叶片沉入水中。 取 6 只小烧杯，各倒入 20 mL 冷开水，用吸管向其中 5 只小烧杯的水中吹气，使 CO2 达到饱和。然后于 6 只小烧杯中各放入 10 片叶圆片，分别置于不同的条件下。,
26、环境因素对光合作用的影响 （叶圆片上浮法）,实验步骤 记录各烧杯中每一叶圆片上浮所需的时间，计算各处理中叶圆片上浮所需的平均时间或一定时间内上浮的叶圆片数。比较不同条件下光合作用的强弱。,环境因素对光合作用的影响 （叶圆片上浮法）,实验结果分析：,植物呼吸强度的测定 （小篮子法）,实验原理 利用 Ba(OH)2 溶液吸收呼吸过程中释放的CO2，实验结束后，用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2，从空白和样品两者消耗草酸溶液之差，即可计算出呼吸过程中释放 CO2 的量。,植物呼吸强度的测定 （小篮子法）,实验器材与试剂 实验仪器 广口瓶，酸式滴定管，纱布 实验试剂 0.05 mol/L Ba(OH)
27、2， 1/44 mol/L 草酸溶液（每 mL相当于 1 mg CO2），指示剂 实验材料 萌发的小麦种子,植物呼吸强度的测定 （小篮子法）,实验步骤 称取萌发的小麦种子 15 g，包入纱布袋内，将纱布袋挂在广口瓶的橡皮瓶塞上，注意不要挂得太低。 在广口瓶中加 0.05 mol/L Ba(OH)2 25 mL，塞上瓶塞，用熔化的石蜡密封瓶口，防止漏气。每 10 min 左右轻轻摇动广口瓶，破坏溶液表面的 BaCO3 薄膜，以利对CO2的吸收。 1 h 后，打开瓶塞，迅速加 2 滴指示剂，用1/44 mol/L 草酸滴定，直到绿色变成紫色为止。记录所耗用的草酸溶液的体积（mL）数。,植物呼吸强度
28、的测定 （小篮子法）,实验步骤 另取同样重量的煮沸杀死的小麦种子，作同样测定，以次作为对照。 计算呼吸强度。,植物呼吸强度的测定 （小篮子法）,实验结果 死种子装置滴定所耗草酸量（V0）： 活种子装置滴定所耗草酸量（V1）： 呼吸强度（CO2，mg/gh）= （V0 V1）/ 种子鲜重（g）时间（h）,过氧化物酶活性的测定,实验原理 过氧化物酶广泛存在于植物的各个组织器官中。在有过氧化氢存在下，过氧化物酶能使愈创木酚氧化，生成茶褐色物质，可用分光光度计测量生成物的含量。,过氧化物酶活性的测定,实验器材与试剂 实验仪器 分光光度计，离心机，天平，研钵 实验试剂 愈创木酚，30% 过氧化氢，20
29、mmol/L KH2PO4，100 mmol/L 磷酸缓冲液（pH6.0），反应混合液 100 mmol/L 磷酸缓冲液（pH6.0）50 mL，加入愈创木酚28L，加热搅拌至愈创木酚溶解，冷却后加入 30% 过氧化氢 19L，混合均匀，保存于冰箱中 实验材料 马铃薯块茎,过氧化物酶活性的测定,实验步骤 粗酶液的提取 称取去皮马铃薯块茎 1 g，加 20 mmol/L KH2PO4 5 mL，于研钵中研磨成均浆，以 4000 r/min 离心 15 min，收集上清液保存于冷处，所得残渣在用 5 mL KH2PO4 溶液提取一次，合并两次上清液。 酶活性的测定 取比色杯 2 只，于一只中加入反
30、应混合液 3 mL， KH2PO4 1mL，作为校零对照，另一只中加入反应混合液 3 mL，上述酶液 1 mL，立即于分光光度计 470 nm 测量 OD 值，每隔 1 min 读数一次。以每分钟 OD 变化值表示酶活性大小。,过氧化物酶活性的测定,实验结果OD470/min鲜重g =,种子活力的快速测定 （氯化三苯基四氮唑法，TTC法）,实验原理 凡有生命力的种子胚部，在呼吸作用过程中都有氧化还原反应，而无生命活力的种胚则无此反应。当 TTC 渗入种胚的活细胞内，并作为氢受体被脱氢辅酶（ NADH 或 NADPH ）上的氢还原时，便由无色 TTC 变为红色的 TTF。,种子活力的快速测定 （
31、氯化三苯基四氮唑法，TTC法）,实验器材与试剂 实验仪器 恒温箱，烧杯，培养皿，镊子，刀片 实验试剂 0.5% TTC 溶液 实验材料 大麦、小麦、籼谷或粳谷的种子,种子活力的快速测定 （氯化三苯基四氮唑法，TTC法）,实验步骤 浸种 将待测种子在 3035 温水中浸种，以增强种胚的呼吸强度。 显色 取吸胀种子 100 粒，用刀片沿种子胚的中心线纵切为两半，将其中的一半置于培养皿中，加入适量的 0.5 % TTC 溶液覆盖种子。然后置于 30 恒温箱中 1 h。观察结果。 将另一半在沸水中煮 5 min 杀死胚，作同样染色处理，作为对照观察。,种子活力的快速测定 （氯化三苯基四氮唑法，TTC法
32、）,实验步骤 计算活种子的百分数。 实验结果 煮沸杀死的种子胚部均为白色。 未煮沸杀死的种子胚部大部分为红色，少数为白色。 活种子的百分率为：,种子活力的快速测定 （红墨水法）,实验原理 凡活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力，而死的种子胚细胞原生质膜丧失这种能力，于是染料便能进入死细胞而染色。,种子活力的快速测定 （红墨水法）,实验器材与试剂 实验仪器 恒温箱，烧杯，培养皿，镊子，刀片 实验试剂 5 % 红墨水 实验材料 大麦、小麦、籼谷或粳谷的种子,种子活力的快速测定 （红墨水法）,实验步骤 浸种 将待测种子在 3035 温水中浸种，以增强种胚的呼吸强度。 显色 取吸胀种子 100 粒
33、，用刀片沿种子胚的中心线纵切为两半，将其中的一半置于培养皿中，加入 5 % 红墨水淹没种子。染色 1015 min。 倒去红墨水，用水冲洗种子，至冲洗液无色，观察结果。,种子活力的快速测定 （红墨水法）,实验步骤 将另一半在沸水中煮 5 min 杀死胚，作同样染色处理，作为对照观察。 计算活种子的百分数。 实验结果 煮沸杀死的种子胚与胚乳均染上红色。 未煮沸杀死的种子胚部大部分为白色或浅红色，少数为红色。 活种子的百分率为：,植物生长调节剂对植物插条不定根发生的影响,实验原理 用植物生长调节剂（生长素类）处理插条，可以促进细胞恢复分裂能力，诱导根原基发生，促进不定根的生长。,植物生长调节剂对植
34、物插条不定根发生的影响,实验器材与试剂 实验仪器 电子天平，烧杯，移液管，量筒等 实验试剂 1000 mg/L 吲哚乙酸溶液 实验材料 各种植物材料,植物生长调节剂对植物插条不定根发生的影响,实验步骤 用 1000 mg/L 吲哚乙酸溶液配制 100 mg/L、 200 mg/L、 300 mg/L 吲哚乙酸溶液。 从室外取植物材料，自茎顶端或枝条上端向下1015 cm 处剪去植物下部分，去除花，保留12 片叶片（如叶面积较大，可保留半张叶）。,植物生长调节剂对植物插条不定根发生的影响,实验步骤 将插枝基部 23 cm 浸泡在吲哚乙酸溶液中（每种溶液中浸 5 枝），并以蒸馏水作对照，8 h 后
35、取出枝条，插入砂质苗床中培养，注意控制温度和湿度。 20 d 后，统计各处理枝条不定根发生的数目，观察根的粗细和长度，以了解不同浓度吲哚乙酸在一定处理时间下对生根的影响。,植物生长调节剂对植物插条不定根发生的影响,实验结果 各吲哚乙酸溶液处理的插条生根情况（平均每株根数、平均根长、粗细）好于对照。,高温和低温对植物的伤害,实验原理 植物组织受到高温或低温伤害时，由于膜的功能受损或结构破坏而透性增大，细胞内各种水溶性物质不同程度地外渗。将植物组织浸入无离子水中，水的电导率将因电解质的外渗而加大。膜伤害愈重，电解质外渗愈多，电导率的增加也愈大。故可用电导率仪测定外液的电导率而得知植物受伤害程度。,
36、高温和低温对植物的伤害,实验器材与试剂 实验仪器 电导率仪，恒温水浴锅，打孔器，注射器，试管，移液管，恒温箱，冰箱等 实验试剂 去离子水 实验材料 植物离体叶片,高温和低温对植物的伤害,实验步骤 取正常生长的植株叶片若干，用水洗净并用吸水纸吸干叶表面水分，将一份放在20 左右的温度下冷冻 30 min，另一份放在 40 左右的温度下处理 30 min，第三份裹入潮湿的纱布中在室温下作对照。 将处理叶片与对照叶片用去离子水冲洗 2 次，再用洁净滤纸吸净表面水分，每组叶片取叶圆片 20 片，分别放入注射器内，各加 10 mL 去离子水，抽气使叶片沉入水中。,高温和低温对植物的伤害,实验步骤 将叶片
37、及去离子水分别倒入 3 个试管中，在室温下保持 1 h，期间要多次摇动试管。 用电导率仪测定 3 组的初电导率（1）。测定后，将试管置沸水浴中 10 min，取出冷却至室温，并平衡 20 min，摇匀，测终电导率（2）。,高温和低温对植物的伤害,实验结果 按下式计算相对电导率相对电导率 L = 1 /2相对电导率的大小表示细胞受伤害的程度。由于对照也有少量电解质外渗，故可用下式计算伤害度高温伤害度 = （L高L常）/（1 L常）低温伤害度 = （L低L常）/（1 L常）,高温和低温对植物的伤害,实验结果 如用蒸馏水实验，相对电导率计算可用下式相对电导率 L = （1 0）/ （ 2 0 ）0 为实验用蒸馏水的电导率,
