1、实验二（P124） 血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳 （Cellulose acetate membrane electrophoresis of serum proteins）,实验目的,1、掌握电泳法分离蛋白质的原理2、学习醋酸纤维薄膜电泳分离血清蛋白质的 原理和操作方法3、学习蛋白质染色的方法,分离蛋白质的方法,分离方法,沉淀法,层析法,电泳法,实验原理,电泳：是指带电粒子在电场中向本身所带电荷相反的电极移动的现象。在一定pH条件下，不同的蛋白质由于具有不同的等电点而带不同性质的电荷，因而在一定的电场中它们的移动方向和移动速度也不同，即它们的电泳迁移率不同，因此，可对它们进行分离。,以蛋白质为
2、例：,H,OH,H,OH,pHpI pH=pI pHpI,影响电泳迁移率的因素：1、内在因素：蛋白所带净电荷的性质和电荷的量、蛋白的大小和形状2、外界因素：电场强度、溶液的pH值、溶液的离 子强度和电渗现象,血清中几种主要蛋白组分：,缓冲液pH=8.6,pIpH,血清蛋白带负电荷,在电场中向正极移动,醋酸纤维薄膜电泳,醋酸纤维薄膜作为支持介质 醋酸纤维薄膜：将纤维素的羟基乙酰化为醋酸酯，溶于丙酮后制成有均一细密微孔的薄膜，其厚度为0.10.15mm,染色剂,一般蛋白质染色常使用氨基黑、考马斯亮蓝、丽春红 糖蛋白用甲苯胺蓝或过碘酸-Schiff试剂 脂蛋白则用苏丹黑或品红亚硫酸染色,实验操作,1
3、. 醋酸纤维素薄膜的润湿与选择将醋酸纤维素薄膜浸于缓冲液中约30min后，取醋酸纤维素薄膜放在滤纸中并吸干表面液体。整条薄膜颜色一致而无白色斑点，则表明薄膜质地均匀(实验中应选择质地均匀的膜)。 2. 电泳槽的准备电泳槽有两个互相隔离的槽，各自装有缓冲液，接不同的电极，红色为正极，黑色为负极。每个槽上都有一根可移动的横杆，滤纸的一头搭在横杆上，另一头浸入缓冲液中，形成滤纸桥。,3.点样：点样前，将薄膜粗糙面朝上，距一边1.5cm处用铅笔划一条平行线作为点样标志区。点样时，用点样器毛吸取血清，在薄膜粗糙面上轻而温和地印一下（盖章法）。点样区距阴极端1.5cm（见图）。此步是实验的关键。醋酸纤维素
4、薄膜规格及点样位置示意图（黑线处为点样位置）,点样区,6.5cm,1.5cm,4.电 泳将点样端的薄膜平贴在阴极电泳槽支架的滤纸桥上（点样面朝下），另一端平贴在阳极端支架上。要求薄膜紧贴滤纸桥并绷直，中间不能下垂。连接好电泳仪。在室温下电泳，恒压110V，打开电源开关，电泳时间60 min。电泳后，调节旋钮使电压为零，关闭电泳仪切断电源。,5.染色：电泳完毕后将薄膜取下, 放在含氨基黑10B染色液的培养皿中浸泡5min，染色时可置于摇床，均匀摇晃。 6.漂洗：将薄膜从染色液中取出后移置漂洗液中漂洗3次，每次5 min,直至背景蓝色脱尽，条带清晰为止，取出薄膜放在滤纸上，用吹风机冷风吹干或者自然
5、晾干。,8.记录和分析实验结果 透明后可将薄膜上的5条色带根据其颜色深浅、形状、大小及相对位置进行描述、记录，并判断分析结果。透明后的薄膜可作扫描或照相。正常人血清醋酸纤维素薄膜电泳示意图 1为清蛋白，2，3，4，5，分别为1，2，及球蛋白，6为点样原点,注意事项,1、薄膜的浸润与选膜是电泳成败的关键之一。 2、点样时，应将薄膜表面多余的缓冲液用滤纸吸去，薄膜吸水量以不干不湿为宜。 3、点样时，动作要轻、稳，用力不能太大，以免损坏薄膜或印出凹陷影响电泳区带分离效果。 4、点样应点在薄膜的粗糙面上，点样量要适量，不宜过多或过少。 5、电泳时应将薄膜的点样端置于电泳槽的负极端，且点样面向下。 6、应控制染色时间。时间长，薄膜底色不易脱去；时间太短，着色不易区分，或造成条带染色不均匀，必要时可进行复染。,思考题,1.电泳时为什么要将点样的一端靠近负极端？2.电泳图谱清晰的关键是什么？如何正确操作？,小知识：血清蛋白电泳结果的临床意义,
