1、实验十一 植物组织总DNA的提取,掌握用CTAB法提取植物总DNA的方法和基本原理。 学习利用紫外分光光度法测定DNA溶液的浓度。,一、实验目的,二、实验原理,通常采用机械研磨的方法破碎植物的组织和细胞，由于植物细胞匀浆含有多种酶类(尤其是氧化酶类)对DNA的抽提产生不利的影响，在抽提缓冲液中需加入抗氧化剂或强还原剂(如巯基乙醇)以降低这些酶类的活性。在液氮中研磨，材料易于破碎，并减少研磨过程中各种酶类的作用。CTAB, SDS等离子型表面活性剂，能溶解细胞膜和核膜蛋白，使核蛋白解聚，从而使DNA得以游离出来。,再加入苯酚和氯仿等有机溶剂，能使蛋白质变性，并使抽提液分相，因核酸(DNA、RNA
2、)水溶性很强，经离心后即可从抽提液中除去细胞碎片和大部分蛋白质。上清液中加入异丙醇或乙醇使DNA沉淀，沉淀DNA溶于双蒸水或TE溶液中，即得植物总DNA溶液。之后可加入RNA酶降解其中的RNA，再用氯仿除去RNA酶，得到较纯的DNA制剂。,DNA的吸收光谱峰在260 nm处，据计算，测定此波长下DNA溶液的OD值，当OD260=1时，双链DNA含量约为50 g/ml，据此可用紫外分光光度计测定溶液中DNA含量。由于蛋白质的吸收峰在280 nm处，在测定DNA含量时，还常计算OD260/OD280之值，如该值为1.8-2.0时，认为已达到较高的纯度，如低于此值，表明其内含杂质较多，可能影响酶切反
3、应。,水稻品种的幼苗叶片,三、实验材料,四、实验器具、药品试剂,水浴锅，研钵，微量移液器，枪头，离心管，台式离心机，液氮，恒温箱，标签纸，紫外分光光度计，磁力搅拌机，剪刀等。,2% CTAB抽提缓冲溶液，异丙醇, 氯仿-异戊醇等,CTAB法流程图,五、实验方法,(1) 2%CTAB抽提缓冲液在65水浴中预热。 (2)取少量叶片（约0.2 g）置于研钵中，用液氮磨至粉状； (3) 在液氮挥发将尽而植物组织尚未解冻时迅即加入700 l的2%CTAB抽提缓冲液，轻轻搅动； (4) 将磨碎液分倒入1.5 ml的灭菌离心管中，磨碎液的高度约占管的三分之二； (5) 置于65的水浴槽或恒温箱中，每隔10
4、min轻轻摇动，40 min后取出；,1. DNA的提取,（6）冷却2 min后，加入氯仿-异戊醇（24：1）至满管，剧烈振荡23 min，使两者混合均匀； （7）放入离心机中10 000 rpm离心10 min，与此同时，将600 l的异丙醇加入另一新的灭菌离心管中； （8） 用移液器轻轻地吸取上清夜，转入含有异丙醇的离心管内，将离心管慢慢上下摇动30 sec，使异丙醇与水层充分混合至能见到DNA絮状物；,（9）10000 rpm离心1 min后，立即倒掉液体，注意勿将白色DNA沉淀倒出，将离心管倒立于铺开的纸巾上； （10）60 sec后，直立离心管，加入720 l的75%乙醇及80 l
5、5 M的醋酸钠，轻轻转动，用手指弹管尖，使沉淀与管底的DNA块状物浮游于液体中； （11）放置30 min，使DNA块状物的不纯物溶解； （12） 10000 rpm离心1 min后，倒掉液体，再加入800 l 75%的乙醇，将DNA再洗 30 min；,（13）10000 rpm离心30 sec后，立即倒掉液体，将离心管倒立于铺开的纸巾上；数分钟后，直立离心管，干燥DNA（自然风干或用风筒吹干）； （14）加入50 l 0.5 TE(含RNase)缓冲液，使DNA溶解，置于37恒温箱约15 h，使RNA消解； （15）置于-20保存、备用。,称取样品，液氮研磨，加入预热的(65 ) CTAB
6、及-巯基乙醇,保温1h,期间不停的摇均,吸取上清液,移至新的离心管中,加入等体积氯仿：异戊醇（24：1），轻缓颠倒混匀,10000rpm,10min,取上清液，移至新的离心管中,加等体积氯仿：异戊醇,颠倒混匀, 10000rpm,10min,取上清液，加入0.6-0.7V的异丙醇（预冷），后4 /-20 保温沉淀,10000rpm,10min离心取沉淀，70%乙醇清洗两次，吹干,用TE溶解DNA,然后低温保存,（1）叶片磨得越细越好。 （2）移液器的使用。 （3）由于植物细胞中含有大量的DNA酶，因此，除在抽提液中加入EDTA抑制酶的活性外，第一步的操作应迅速，以免组织解冻，导致细胞裂解，释放出DNA酶，使DNA降解。,六、注意事项,七、作业,(1)本实验所得的植物总DNA制剂中含有哪些遗传物质？ (2) 在DNA抽提过程中造成DNA分子断裂的主要因素有哪些? (3) 本实验中所用到下列试剂的作用各是什么?CTAB, 氯仿, 异丙醇, 75%乙醇, EDTA，巯基乙醇,
