收藏 分享(赏)

细菌荚膜多糖.pdf

上传人:精品资料 文档编号:8446505 上传时间:2019-06-27 格式:PDF 页数:7 大小:165.71KB
下载 相关 举报
细菌荚膜多糖.pdf_第1页
第1页 / 共7页
细菌荚膜多糖.pdf_第2页
第2页 / 共7页
细菌荚膜多糖.pdf_第3页
第3页 / 共7页
细菌荚膜多糖.pdf_第4页
第4页 / 共7页
细菌荚膜多糖.pdf_第5页
第5页 / 共7页
点击查看更多>>
资源描述

1、Mini-Review 小型综述微生物学报 Acta Microbiologica Sinica51( 12): 1578 1584; 4 December 2011ISSN 0001 6209; CN 11 1995 /Qhttp: / /journals im ac cn/actamicrocn基金项目 : 公益性行业 ( 农业 ) 科研专项 ( 20080316); 农业部 “重大动物疫病防治关键技术引进 ”项目 ( 2006-G57)*通信作者 。E-mail: fwxsjl 126 com作者简介 : 王楷宬 ( 1981 ), 女 , 山东人 , 助理研究员 , 博士 , 主要从事

2、兽医微生物研究 。Tel: + 86-532-85630682; E-mail: kaichengwangyahoo cn收稿日期 : 2011-06-01; 修回日期 : 2011-10-04细菌荚膜多糖王楷宬1, 2, 陆承平1, 范伟兴2*1南京农业大学动物医学院 , 南京 2100952中国动物卫生与流行病学中心 , 青岛 266032摘要 : 随着分子生物学 、糖化学和免疫学的发展 , 细菌荚膜多糖的研究逐步深入 。不仅对其特性及组成有了进一步的了解 , 而且对其多糖合成相关基因 、合成调节和致病性进行了更为细致的研究 。本文概括了细菌荚膜多糖的化学结构 、合成相关基因 、多样性产生

3、机制 、合成调节 、功能与致病性和应用前景 , 总结其研究热点 ,以期为荚膜多糖的研究和应用提供理论依据和思路 。关键词 : 荚膜多糖 , 化学结构 , 合成基因 , 致病性 , 应用中图分类号 : Q935 文献标识码 : A 文章编号 : 0001-6209 ( 2011) 12-1578-07某些细菌生活过程中可在细胞壁的外周产生一种黏液样物质 , 包围整个菌体 , 称为荚膜 。当多个细菌荚膜融合形成一个大的胶状物 , 内含多个细菌细胞时 , 则称为菌胶团 1。多数细菌荚膜主要含多糖类 , 如猪链球菌 , 少数则主要含多肽类 , 如炭疽杆菌 ,也有极少数细菌两者都有 , 如巨大芽孢杆菌

4、。荚膜具有抗原性 , 并具有种和型特异性 , 可用于细菌鉴定 1。存在于细菌外层的多糖荚膜 , 能直接与其他细菌或环境相互作用 , 是细菌的重要毒力因子 。1 化学结构荚膜多糖通过分子间氢键及其它非共价键与细胞壁间形成坚韧的外膜 , 黏附于细菌表面 。荚膜多糖高度含水 ( 95% ) 2, 它们是由重复的单糖通过糖苷键连接而成同聚体或异聚体 。荚膜多糖不仅因包含的单糖种类不同而不同 , 也因单糖的连接方式而产生差异 。多糖链中还存在支链以及有机或无机分子 , 这使荚膜多糖结构更为复杂 。在人类病原中 ,已发现大量不同的荚膜血清型 。大肠杆菌中已发现超过 90 种荚膜多糖 ( K 抗原 ) 血清

5、型 , 其中只有少数具有侵袭感染力 3。带有 2, 8 N 乙酰神经氨酸 ( NeuNAc) 同聚物 K1 抗原的大肠杆菌 , 是新生儿脑膜炎的主要病原 4, 这类大肠杆菌的 K 抗原具有相同的多糖链 , 只是多糖的修饰存在差异 。2 多糖合成的相关基因荚膜多糖合成相关基因主要包含荚膜多糖合成调节基因 , 糖基转移酶基因和转运基因 。革兰氏阴性菌与革兰氏阳性菌的荚膜多糖合成相关基因各有特点 , 以下分述之 。2. 1 革兰氏阴性菌荚膜产生相关基因大肠杆菌 5 6、流感嗜血杆菌 7、脑膜炎奈瑟王楷宬等 : 细菌荚膜多糖 /微生物学报 ( 2011) 51( 12)菌 8、伤寒沙门氏菌 9、青枯假

6、单胞菌 10、肺炎克雷伯菌 11、枯萎欧文菌 12和解淀粉欧文氏菌 13等 , 许多革兰氏阴性菌的荚膜多糖合成相关基因簇已被克隆 。这些细菌的荚膜合成相关基因都位于染色体的单一位点上 , 这一特性使得荚膜生物合成或转运相关的大量基因能够协同调节 。大肠杆菌的荚膜基因簇是迄今为止研究最多的 , 可以作为革兰氏阴性菌荚膜基因簇的范例 。大肠杆菌可以产生多种化学结构不同的荚膜多糖 3。大肠杆菌的 K 抗原依生物学和化学特性不同分为 3个群 ( group) 14, I 群 K 抗原又分为 Ia 群 ( 不含氨基糖 ) 和 Ib 群 ( 含氨基糖 ) 。与大肠杆菌比较 , 不同菌属间荚膜基因簇的组成有

7、显著的相似性 , 具有 I 群样荚膜基因簇的细菌有肺炎克雷伯菌 、解淀粉欧文菌 、枯萎欧文菌和青枯假单胞菌 10 13; 具有 群样荚膜基因簇的细菌有流感嗜血杆菌 b 型 、B 群脑膜炎奈瑟菌 、伤寒沙门菌的 Vi 抗原 8 9, 15, 其中流感嗜血杆菌和脑膜炎奈瑟菌的荚膜基因簇就包含在大肠杆菌的 K5 基因簇中 。流感嗜血杆菌 b 型荚膜基因簇中有一个保守的基因区域 , 中间是与多糖生物合成相关的血清型特异的区域 2, 两端是在所有流感嗜血杆菌中都保守的区域 1 和 3。b 型荚膜多糖基因簇的区域 1 含有 4 个基因 bexABCD, 它们属于一个转录单元 16。区域 2 中也包含 4

8、个基因 , 其中一个编码 b 型多糖生物合成必需的 CDP 核糖焦磷酸化酶 。大部分 b 型菌的荚膜多糖基因簇是重复的 , 两个 17 kb的重复拷贝由一个含有 bexA 的区域相连接 。B 群脑膜炎奈瑟菌的荚膜多糖基因簇较为复杂 , 通常包含 5 个区域 。区域 A 与多糖生物合成有关 , 区域 B 和 C 参与多糖转运 , 区域 D 和 E 调节多糖的表达 8。区域 C 包含 4 个基因 ctrABCD, 它们是一个转录单元 ; 区域 B 包含 2 个基因 lipAB, 它们是两个独立的转录单元 ; 区域 D 包含 4 个基因 ,均与 B 群 多 糖 的 生 物 合 成 有 关 , 包 括

9、 galE 和rfbBCD, 其中 rfbBCD 参与鼠李糖的生物合成 。galE的表达产物能产生截短的脂寡糖 ( LOS) 17, 有实验证明这段与 LOS 合成相关的基因是通过基因重排从脑膜炎球菌得到的 。2. 2 革兰氏阳性菌荚膜产生相关基因肺炎链球菌 、金黄色葡萄球菌等 18 19革兰氏阳性菌的荚膜多糖合成相关基因簇已经被克隆 , 现针对这些微生物的荚膜多糖合成相关基因簇进行阐述 。肺炎链球菌全部 90 个血清型的荚膜多糖合成相关基因簇已被测序并分析 。除 3 型和 37 型外 , 其余各血清型的荚膜多糖合成相关基因簇均是位于染色体上 dexB 和 aliA 之间的一个完整转录单位 ,

10、 具有位于上 游 位 置 高 度 保 守 的 4 个 合 成 调 节 基 因( cpsABCD), 基因簇内包含多种糖基转移酶 、多糖合成酶 、乙酰基转移酶和翻转酶等 20。这种型特异性基因位于中间区域 , 两侧为在各血清型中高度同源的基因 , 这种基因簇结构被称为盒样结构 , 此结构也存在于 其 他 链 球 菌 的 荚 膜 多 糖 合 成 相 关 基 因 簇中 21, 如 : 肺炎链球菌 、无乳链球菌和嗜热链球菌 。肺炎链球菌 3 型的荚膜多糖合成相关基因簇中发现了 7 个基因 。这些基因中的 4 个 ( cps3DSUM) 是 3型特有的 。基因被分成两个转录单位 , cps3DS 和cp

11、s3UM 22。临近 cps3D 上游的 938 bp片断是一个包含肺炎链球菌染色体中重复序列的小 ORF, 其在2、3、5、6B、8 和 22 型中都存在 , 这个区域对肺炎链球菌 3 型的荚膜多糖合成不起作用 , 但对肺炎链球菌荚膜基因簇的存在非常重要 22。另外 3 个基因( cps3BCP) 在重复序列的上游 , 与 19F 型的 cpsfBCD基因同源 。cps3M 基因的下游是保守序列 , 在 3 型中包含两个基因 ( tnpA 和 plpA) 22, 而这两个基因均为部分缺失并表达非功能蛋白 。金黄色葡萄球菌1 型荚膜基因簇是在 34kb 长染色体上分散的不连续的遗传成分 , 而

12、且具有型特异性 23。5 型的荚膜基因簇则不同 , 利用探针的杂交试验表明 5 型的荚膜基因簇与其他荚膜基因型相似 , 荚膜特异性序列也与大肠杆菌的 II 群荚膜基因相似 18 19。3 荚膜多样性产生的机制存在如此多化学结构不同的荚膜多糖 , 使得人们对荚膜多糖的多样性产生机制尤为关注 。革兰氏阴性菌的荚膜合成相关酶基因的 A + T 含量高 , 这些荚膜合成基因的亲本可能相同 24。群大肠杆菌中 , 区域 2 的 A + T 含量较区域 1、3 高 , 有研究者认为 群大肠杆菌荚膜多样性是由于获得了不同的区域 2 序列造成的 。缺失不同 群大肠杆菌荚膜基因簇区域 1 与 2 或区域 2 与

13、 3 之间的任何保守序列 , 均会阻止能引起区域 2 序列改变的某些点特异性转位的发生 。在区域 1、3 之间的荚膜基因簇与外9751Kaicheng Wang et al /Acta Microbiologica Sinica( 2011) 51( 12)源 DNA 发生同源重组时 , 可能会产生新的区域 2 序列 。放 射 性 物 质 标 记 不 同 群 荚 膜 多 糖 基 因 簇KpsS 和 KpsT 蛋 白 的 C 端 , 充 分 证 实 了 这 一 假设 25。kpsS 与 kpsT 基因的 3端分别位于区域 1、2连接处和区域 2、3 连接处 , 因此这两个蛋白 C 端的不同是由区

14、域 1 与 3 之间的荚膜基因簇发生重组造成的 。这种通过同源重组获得新的区域 2, 从而形成荚膜多样性的机制 , 同样适用于流感嗜血杆菌和脑膜炎奈瑟菌 。在这两个细菌中 , 染色体重排对荚膜多糖的合成也很重要 。B 群脑膜炎奈瑟菌可因IS1301 的插入与否决定 B 群荚膜多糖是否表达 26。neuA 基因的失活使得 CMP-乙酰神经氨酸无法表达 , 因而阻止了荚膜的产生和 LOS 的唾液酰化 。通过 neuA 基因中 IS1301 的自发切除 , 细菌还能恢复产生荚膜和唾液酰化 LOS 的能力 , 对抗补体介导的杀伤作用和细胞吞噬作用 , 从而使感染过程中的微生物能够生存 。b 型流感嗜血

15、杆菌中重复的 cap 基因簇存在于 IS1016 重复序列之间 , 它实际上是一个包含荚膜基因簇的复合转座子 27。IS1016 元件的存在使 cap 基因簇扩大 , 增加了 b 型荚膜多糖的产量 。在连续的 cap 基因簇一端 , 缺失 bexA 基因的一个拷贝中的大部分 ( 1. 2 kb), 其他的功能性 bexA 基因位于连接 cap 基因簇中两个拷贝之间的桥连位置 。这种 cap 基因簇的排列形式 , 几乎存在于所有的 b 型流感嗜血杆菌 。发生在血清型特异性基因区域外侧的保守序列之间的同源重组 , 是肺炎链球菌荚膜多样性产生的主要原因 。有极少数的荚膜型改变由转座产生 , 一个转座

16、体可以产生两种荚膜型 28, 稳定的二元转座体中有插在染色体远端部位的二代荚膜基因簇 29,但这种稳定的二代荚膜基因簇形成的基本条件还不清楚 。随着肺炎链球菌荚膜基因簇分子遗传学的进一步研究 , 将会逐步解决这一问题 。4 荚膜多糖的合成调控荚膜多糖的合成调节是一个由调节蛋白相互作用的复杂过程 , 多发生在转录水平 。伤寒沙门氏菌的荚膜多糖合成受 ompR-envZ 和 rscB-rscC 两个系统调控 , 这两个系统都对渗透压改变产生应答 30。大肠杆菌荚膜多糖合成调节中 , RcsA 和 RcsB 是两个正调节因子 , 而 RcsA 活性常受到抑制 , 这是由于其会被 ATP-依赖性 Lo

17、n 蛋白酶迅速降解 , 因而 Lon也被认为是荚膜合成的负调节因子 31。肺炎克雷伯菌中 RmpA 和 RcsB 的共同作用是荚膜合成调节必须的 , 而荚膜多糖合成相关基因簇的启动子 rmpA受铁活性正调节和 Fur 负调节 32。金黄色葡萄球菌的荚膜多糖合成相关基因簇启动子的正调节因子是 agr 和 sarA, 外界环境的改变也直接影响荚膜多糖合成 , 当培养环境中的 CO2含量增加时 , 金黄色葡萄球菌的荚膜多糖表达量下降 33; 溶血巴氏杆菌的培养温度升高至 43 时 , 荚膜多糖的表达量下降 34。这些表相也暗含着某些未被摸清的转录调节机制 , 有待进一步研究 。5 荚膜多糖的生物学功

18、能及致病性荚膜因具有耐干燥 、粘附 、抵抗宿主特异性或非特异性免疫等功能 , 使其成为致病菌的一种重要的毒力因子 35。5. 1 耐干燥含水的荚膜层围绕在细菌的表面 , 可以保护细菌免受脱水的损害 。这使有荚膜的病原更易在宿主间传播 。大肠杆菌 、不动杆菌和枯萎欧文菌的粘性菌株比非粘性菌株更耐干燥 36。以大肠杆菌为例 ,干燥环境使合成荚膜多糖合成相关酶的表达水平升高 36。细菌在缺水时能够调节多糖表达的机制还不清楚 。一个可能的机制是 , 干燥的环境改变了表面的渗透性 , 从而启动了荚膜合成 。5. 2 黏附荚膜多糖能够促进细菌与细胞表面或细菌之间的黏附 , 从而促进生物被膜的形成和在不同生

19、境中定植 37。当某些细菌定植于口腔表面并形成细菌斑块时 , 可为其他细菌的定植提供基础条件 38。这种不同种属细菌的相互作用能在生物被膜内部形成微生物共同体 , 生物被膜的形成能够使细菌个体免受细胞吞噬或噬菌体的损害 。尿道致病性大肠杆菌的荚膜多糖形成的生物被膜使得其更易感染并附着于尿道 39。5. 3 抵抗宿主的非特异性免疫在细菌感染的侵袭阶段 , 荚膜多糖与宿主免疫系统之间的相互作用 , 决定着感染的结果 40。没有特异性抗体时 , 荚膜能抵抗宿主的非特异性免疫防御机制 。这些防御机制包括经旁路途径 C3b 介导0851王楷宬等 : 细菌荚膜多糖 /微生物学报 ( 2011) 51( 1

20、2)的多核白细胞调理吞噬作用激活的补体级联反应 。这种旁路途径由血清蛋白 C3b 与细菌表面发生的非特异性绑定而激活 。绑定的 C3b 然后与 B 因子相互作用而激活 , 并形成 C3 转化酶 ( C3bBb) 。这导致更多的 C3 绑定 , 进而在细菌外表面形成膜攻击复合物 , 导致细菌的溶解和死亡 41。荚膜能够形成阻隔补体因子的屏障 , 抵抗补体介导的杀伤作用 , 从而掩藏内部能活化旁路途径的的细胞表面结构 42。包含 N-乙酰神经氨酸的荚膜多糖不能激活旁路途径 。这种现象可能与多糖中 N-乙酰神经氨酸直接与 H 因子绑定有关 。绑定的 H 因子能作为辅助因子启动 I 因子与 C3b 结

21、合形成 iC3b, 从而防止膜攻击复合物的形成 41。荚膜能与 O 抗原等细胞表面结构共同对抗补体介导的杀伤作用 。因此 , 细菌表面的这种特殊的联合作用 , 赋予细菌高度抵抗补体介导的杀伤作用的能力 43。荚膜多糖也可以对抗补体介导的调理吞噬作用 。荚膜在空间上掩盖了内部细胞表面的 C3b, 阻止其与吞噬细胞表面的 C3b 受体相结合 。经多糖荚膜传递到细胞表面的负电荷也增强了细菌的抵抗能力 。荚膜带的电荷越高 , 细菌的抗吞噬作用就越强 44。除了这些细菌荚膜与宿主非特异性免疫因子之间的相互作用之外 , 某些荚膜还可以通过影响细胞因子的释放来调节宿主的免疫反应 , 因而阻断宿主细胞介导的免

22、疫反应 。5. 4 抵抗宿主特异性免疫虽然大部分荚膜多糖可以诱导免疫反应 , 但少数荚膜多糖免疫原性极低 。大肠杆菌 K1 和 B 群脑膜炎奈瑟菌的荚膜多糖含有乙酰神经氨酸组分 45,大肠杆菌 K5 抗原与脱硫肝素相似 46, 而宿主的组织多糖也有与上述结构相似的组分 , 故这类荚膜的免疫原性低 , 感染后机体产生抗体量亦少 , 可能是这些细菌能够抵抗宿主特异性免疫反应的重要原因 。6 荚膜多糖的应用6. 1 疫苗荚膜多糖是非 T 细胞依赖性抗原 , 无免疫记忆 , 但纯化的荚膜多糖制备的疫苗仍有较好效果 。如肺炎链球菌的 23 价多糖疫苗已于 1983 年在美国批准使用 , 该疫苗由 23

23、种纯化荚膜多糖组成 , 覆盖美国 90% 的肺炎链球菌流行血清型 47。但多糖疫苗的局限性在于荚膜多糖是非 T 细胞依赖性抗原 ,其免疫应答因年龄而异 , 健康成年人可产生良好的免疫应答 , 而 2 岁以下的婴幼儿不能对疫苗产生有效的保护性抗体应答 48。多糖用作疫苗受此限制 ,使人们对荚膜疫苗有了新的思考 。1929 年发现 , 荚膜多糖与蛋白共价连接能提高荚膜多糖的免疫原性 , 诱导 T 细胞依赖性抗体的产生 , 这一理论首先被流感嗜血杆菌 b 型结合疫苗的成 功 研 制 所 证实 49。基于这一成功经验 , 一种 7 价载体结合肺炎链球菌荚膜疫苗于 2000 年在美国上市并被推荐用于婴幼

24、儿的常规免疫 , 该疫苗系 7 种纯化荚膜多糖( 4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F, 23F) 与非毒性突变白喉类毒素 ( CRM197) 的复合物 。实验证实这种共价结合抗原能诱发 T 细胞依赖性免疫应答反应 , 激活 T 细胞分泌细胞因子 , 可增加婴幼儿体内血清抗体效价 ,激活免疫记忆细胞 , 诱导机体产生持久的免疫记忆反应 50。6. 2 治疗癌症癌症最令人恐惧的是癌细胞能扩散至周围组织和其他器官 , 并造成死亡 。所以寻找阻止癌细胞扩散的有效抑制剂非常重要 。癌症的扩散过程包括 :癌细胞自原肿瘤处分离 , 进入血液 , 通过血液循环进入其他组织 。在最后一步中 , 癌细

25、胞的唾液酸化的路易斯碳水化合物与内皮细胞的 ELAM-1 相互作用 , 从而紧密地绑定到细胞表面 51。因而唾液酸化的路易斯碳水化合物在扩散过程中对介导癌细胞与内皮细胞之间相互作用有重要意义 。无乳链球菌 a 和 b 型的荚膜多糖由带有三糖链的 4) -b-D-Glcp-( 1-4) -b-D-Galp-糖骨架单元组成的 。这两个型的荚膜多糖与唾液酸化的路易斯碳水化合物有相似结构 , 但没有唾液酸化的路易斯碳水化合物所具有的支链岩藻糖残基 。无乳链球菌 a 和 b 型荚膜多糖是天然多价物 , 比单价的唾液酸化的路易斯碳水化合物更易与内皮细胞相结合 , 研究者利用细菌的岩藻糖基转移酶修饰此多糖

26、, 使其更具生物活性 , 修饰的多糖能够阻止癌细胞与内皮细胞结合 , 从而防止癌细胞扩散 , 治疗癌症 52。细菌荚膜多糖作为细菌的重要表面抗原 , 其结构 、合成与功能已越来越受到重视 。随着对各种带有荚膜的细菌研究的深入 , 将会进一步揭示荚膜多糖的合成相关基因 、产生与调节机制 , 进而对同种或异种细菌间的基因重组有更清晰的认识 。荚膜多糖1851Kaicheng Wang et al /Acta Microbiologica Sinica( 2011) 51( 12)在细菌诊断 、疫苗和癌症治疗中的价值已被证实并将在更多细菌和疾病中得以应用 。在此基础上 , 更可通过生物工程手段对细菌

27、进行改造 , 使细菌荚膜向有利于人类应用的方向进行改变 , 产生新的疫苗株或有应用意义的多糖 。参考文献 1 陆承平 兽医微生物学 第四版 北京 : 中国农业出版社 , 2007: 15-16 2 Costerton JW, Irvin RT, Cheng KJ The bacterialglycocalyx in nature and disease Annual Review ofMicrobiology, 1981, 35: 299-324 3 Orskov F, Orskov I Escherichia coli serotyping anddisease in man and ani

28、mals Canadian Journal ofMicrobiology, 1992, 38( 7): 699-704 4 Robbins JB, McCracken GH, Jr , Gotschlich EC,Orskov F, Orskov I, Hanson LA Escherichia coli K1capsular polysaccharide associated with neonatalmeningitis The New England Journal of Medicine,1974, 290( 22): 1216-1220 5 Roberts I, Mountford

29、R, High N, Bitter-Suermann D,Jann K, Timmis K, Boulnois G Molecular cloning andanalysis of genes for production of K5, K7, K12, andK92 capsular polysaccharides in Escherichia coli TheJournal of Bacteriology, 1986, 168( 3): 1228-1233 6 Silver RP, Finn CW, Vann WF, Aaronson W,Schneerson R, Kretschmer

30、PJ, Garon CF Molecularcloning of the K1 capsular polysaccharide genes of Ecoli Nature, 1981, 289( 5799): 696-698 7 Kroll JS, Zamze S, Loynds B, Moxon ER Commonorganization of chromosomal loci for production ofdifferent capsular polysaccharides in Haemophilusinfluenzae The Journal of Bacteriology, 19

31、89, 171( 6):3343-3347 8 Frosch M, Weisgerber C, Meyer TF Molecularcharacterization and expression in Escherichia coli of thegene complex encoding the polysaccharide capsule ofNeisseria meningitidis group B Proceedings of theNational Academy of Sciences, 1989, 86 ( 5 ): 1669-1673 9 Hashimoto Y, Li N,

32、 Yokoyama H, Ezaki T Completenucleotide sequence and molecular characterization ofViaB region encoding Vi antigen in Salmonella typhiThe Journal of Bacteriology, 1993, 175 ( 14 ): 4456-4465 10 Huang J, Schell M Molecular characterization of the epsgene cluster of Pseudomonas solanacearum and itstran

33、scriptional regulation at a single promoter MolecularMicrobiology, 1995, 16( 5): 977-989 11 Arakawa Y, Wacharotayankun R, Nagatsuka T, Ito H,Kato N, Ohta M Genomic organization of the Klebsiellapneumoniae cps region responsible for serotype K2capsular polysaccharide synthesis in the virulent strainC

34、hedid The Journal of Bacteriology, 1995, 177 ( 7):1788-1796 12 Dolph P J, Majerczak DR, Coplin DL Characterizationof a gene cluster for exopolysaccharide biosynthesis andvirulence in Erwinia stewartii The Journal ofBacteriology, 1988, 170( 2): 865-871 13 Bugert P, Geider K Molecular analysis of the

35、amsoperon required for exopolysaccharide synthesis ofErwinia amylovora Molecular Microbiology, 1995, 15( 5): 917-933 14 Pearce R, Roberts I S Cloning and analysis of geneclusters for production of the Escherichia coli K10 andK54 antigens: identification of a new group of serA-linked capsule gene clu

36、sters The Journal ofBacteriology, 1995, 177( 14): 3992-3997 15 Kroncke KD, Boulnois G, Roberts I, Bitter-SuermannD, Golecki JR, Jann B, Jann K Expression of theEscherichia coli K5 capsular antigen: immunoelectronmicroscopic and biochemical studies with recombinant Ecoli The Journal of Bacteriology,

37、1990, 172( 2): 1085-1091 16 Kroll JS, Loynds B, Brophy LN, Moxon ER The bexlocus in encapsulated Haemophilus influenzae: achromosomal region involved in capsule polysaccharideexport Molecular Microbiology, 1990, 4 ( 11): 1853-1862 17 Hammerschmidt S, Birkholz C, Zahringer U, RobertsonBD, van Putten

38、J, Ebeling O, Frosch M Contribution ofgenes from the capsule gene complex ( cps ) tolipooligosaccharide biosynthesis and serum resistance inNeisseria meningitidis Molecular Microbiology, 1994, 11( 5): 885-896 18 Lee CY Cloning of genes affecting capsule expression inStaphylococcus aureus strain M Mo

39、lecular Microbiology,1992, 6( 11): 1515-1522 19 Lee JC, Xu S, Albus A, Livolsi PJ Genetic analysis oftype 5 capsular polysaccharide expression byStaphylococcus aureus The Journal of Bacteriology,1994, 176( 16): 4883-48892851王楷宬等 : 细菌荚膜多糖 /微生物学报 ( 2011) 51( 12) 20 Mavroidi A, Aanensen DM, Godoy D, Sk

40、ovsted IC,Kaltoft MS, Reeves PR, Bentley SD, Spratt BG Geneticrelatedness of the Streptococcus pneumoniae capsularbiosynthetic loci The Journal of Bacteriology, 2007,189( 21): 7841-7855 21 Wessels MR Biology of streptococcal capsularpolysaccharides The Society for Applied BacteriologySymposium Serie

41、s, 1997, 26: 20S-31S 22 Dillard JP, Vandersea MW, Yother J Characterizationof the cassette containing genes for type 3 capsularpolysaccharide biosynthesis in Streptococcus pneumoniaeThe Journal of Experimental Medicine, 1995, 181( 3):973-983 23 Lee CY Association of staphylococcal type-1 capsule-enc

42、oding genes with a discrete genetic element Gene,1995, 167( 1-2): 115-119 24 Frosch M, Muller D, Bousset K, Muller A Conservedouter membrane protein of Neisseria meningitidis involvedin capsule expression Infection and Immunity, 1992, 60( 3): 798-803 25 Pavelka MS, Hayes SF, Silver R P Characterizat

43、ion ofKpsT, the ATP-binding component of the ABC-transporter involved with the export of capsular polysialicacid in Escherichia coli K1 The Journal of BiologicalChemistry, 1994, 269( 31): 20149-20158 26 Hammerschmidt S, Hilse R, van Putten JP, Gerardy-Schahn R, Unkmeir A, Frosch M Modulation of cell

44、surface sialic acid expression in Neisseria meningitidis viaa transposable genetic element The EMBO Journal,1996, 15( 1): 192-198 27 Kroll JS, Loynds BM, Moxon ER The Haemophilusinfluenzae capsulation gene cluster: a compoundtransposon Molecular Microbiology, 1991, 5( 6): 1549-1560 28 Austrian R, Be

45、rnheimer HP, Smith EE, and Mills G TSimultaneous production of two capsular polysaccharidesby pneumococcus II The genetic and biochemical basesof binary capsulation The Journal of ExperimentalMedicine, 1959, 110: 585-602 29 Bernheimer HP, Wermundsen IE, Austrian R Mutationin pneumococcus type 3 affe

46、cting multiple cistronsconcerned with the synthesis of capsular polysaccharideThe Journal of Bacteriology, 1968, 96( 4): 1099-1102 30 Santander J, Roland KL, Curtiss R, 3rd Regulation ofVi capsular polysaccharide synthesis in Salmonellaenterica serotype Typhi Journal of Infection inDeveloping Countr

47、ies, 2008, 2( 6): 412-420 31 Gottesman S, Stout V Regulation of capsularpolysaccharide synthesis in Escherichia coli K12Molecular Microbiology, 1991, 5( 7): 1599-1606 32 Cheng HY, Chen YS, Wu CY, Chang HY, Lai YC,Peng HL RmpA regulation of capsular polysaccharidebiosynthesis in Klebsiella pneumoniae

48、 CG43 The Journalof Bacteriology, 2010, 192( 12): 3144-3158 33 Herbert S, Newell S W, Lee C, Wieland KP, Dassy B,Fournier JM, Wolz C, Doring G Regulation ofStaphylococcus aureus type 5 and type 8 capsularpolysaccharides by CO2 The Journal of Bacteriology,2001, 183( 15): 4609-4613 34 Barrallo S, Reglero A, Revilla-Nuin B, Martinez-BlancoH, Rodriguez-Aparicio LB, Ferrero MA Regulation ofcapsular polysialic acid biosynthesis by temperature inPasteurella haemolytica A2 FEBS Letters, 1999, 445( 2-3): 325-328 35 Taylor CM, Roberts IS Capsular po

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索

当前位置:首页 > 企业管理 > 管理学资料

本站链接:文库   一言   我酷   合作


客服QQ:2549714901微博号:道客多多官方知乎号:道客多多

经营许可证编号: 粤ICP备2021046453号世界地图

道客多多©版权所有2020-2025营业执照举报