1、第二十八章 食品功能性成分的测定本章要点低聚糖 的测定方法大豆异黄酮的测定方法总皂苷的测定方法褪黑素的测定方法肉碱的测定方法免疫球蛋白 IgG 的测定方法EPA 和 DHA 的测定方法超氧化物歧化酶的测定方法总谷胱甘肽(GSH)含量的测定方法10.大蒜辣素含量的测定方法11.核苷酸含量的测定方法12.糖精含量的测定方法13.牛磺酸含量的测定方法14.甘草苷含量的测定方法15.膳食纤维含量的测定方法16.枸杞子多糖含量的测定方法17.香菇多糖的测定方法18.磷脂含量的测定方法19.花生四烯酸含量的测定方法20.-胡萝卜素含量的测定方法21.维生素 E 和胡萝卡素含量的测定方法22.微量硒含量的测
2、定方法23.有机锗含量的测定方法24.茶多酚含量的测定方法25.儿茶素含量的测定方法低聚糖低聚果糖和异麦芽低聚糖的测定方法(高效液相色谱法)本方法适用功能性食品中低聚糖的检测.一,方法提要低聚糖各组分用高效液相色谱法分离并定量测定,以乙腈,水作流动相在碳水化合物分析柱上糖的分离顺序是先单糖后双糖,先低聚后多聚,以示差折射检测器检测. 低聚糖的检测有外标法和内标法,但由于功能性食品一般只需报告低聚糖的总量,故可用厂家提供的基料作对照样,在相同的分离条件下以面积比值法求出样品中低聚糖含量.二,仪器1.高效液相色谱仪:Waters HPLC,510 泵,410 示差折射检测器,数据处理装置.2.超声
3、波振荡器.3.微孔过滤器(滤膜 0.45m).三,试剂1.乙腈(色谱纯).2.水(三蒸水并经 Milli-Q 超纯处理).3.低聚糖对照品:低聚糖难得纯品,故可用厂家提供的基料.为对照品. 低聚果糖(Fructooligosaccharide):国产:一般含蔗果三糖(GF2),蔗果四糖(GF3),蔗果五糖(GF4).液状基料:含量约35%.固状基料:含量约50%.进口:从蔗果三糖(GF2)至蔗果七糖(GF6)有液状,固状,30%96%多种规格.异麦芽低聚糖:有液状,固状,一般含量50%.4.对照样品溶液根据保健食品所强化的品种,准确称取低聚果糖或异麦芽低聚糖基料分别于100mL 的容量瓶中,加
4、水溶解并稀释至刻度,配成低聚果糖约 510mg/mL 或异麦芽低聚糖约 510mg/mL 的对照样品溶液. 四,测定步骤1.样品处理胶囊,片剂,颗粒,冲剂,粉剂(不含蛋白质)的样品用精度 0.000lg 的分析天平准确称取已均匀的样品(由于低聚糖原料含量不一,样品中的强化量也不同,所以样品的称量应控制在使低聚糖最终的进样浓度约510mg/mL 为宜),于 100mL 容量瓶中,加水约 80mL 于超声波振荡器中振荡提取30min,加水至刻度,摇匀,用 0.45m 滤膜过滤后直接这样测定.奶制品(含蛋白质)的样品准确吸取 50mL 于小烧杯中,加 25mL 无水乙醇,加热使蛋白质沉淀,过滤,滤液
5、经浓缩并用水定容至 25mL 刻度.饮料或口服液样品准确吸取一定量的样品,加水稀释,定容至一定体积使低聚糖的最终进样浓度约510mg/mL.果冻或布丁类样品果冻类样品先均匀搅碎,称量,加适量水并加热至 60左右助溶.并于超声波振荡器中振荡提取,然后用水稀释至一定体积.布丁类样品可按奶制品处理.2.色谱分离条件色 谱 柱:Waters 碳水化合物分析柱 3.9mm300mm.柱 温:35.流 动 相:乙腈+水(75+25).流 速:12mL/min.检测器灵敏度:16X.进 样 量:1025L.3.样品测定取样品处理液和对照品溶液各 1025L 注入高效液相色谱仪进行分离.以对照品峰的保留时间定
6、性,以其峰面积计算出样液中被测物质的含量.低聚糖的分离顺序为:低聚果糖:果糖+葡萄糖,蔗糖,蔗果三糖(GF2)蔗果七糖(GF6)异麦芽低聚糖:葡萄糖,麦芽糖,异麦芽糖,潘糖(pentose),异麦芽三糖,异麦芽四糖,异麦芽四糖以上.五,结果计算低聚糖占总糖的百分含量因为各组分均为同系物,所以可用面积归一法计算低聚糖各组分总面积值及各组分占固形物(总糖)的百分含量.低聚果糖占总糖%=式中 Sl果糖+葡萄糖的峰面积;S2蔗糖的峰面积;S3+S7蔗果三糖(GF2)蔗果七糖(GF6)的峰面积.异麦芽低聚糖占总糖%=式中 Sl葡萄糖的峰面积; S2麦芽糖的峰面积;S3+S7异麦芽糖,潘糖,异麦芽三糖,异
7、麦芽四糖,异麦芽四糖以上的峰面积.注:以上数值均可在积分仪中直接读出.2.低聚糖在样品中的百分含量低聚糖%=式中 S样品中各低聚糖组分的峰面积总和;S1对照样品溶液中各低聚糖组分的峰面积总和;m1对照样品质量(g);c对照样品中各低聚糖组分占固形物(总糖)实测的百分含量; 此项由结果计算 5(1)求出. 如对照样品为液体基料还应乘以固形物的含量:V样品定容体积(mL);V1对照样品定容体积(mL);m样品质量(g).举例:(1)样品(约含低聚果糖 65%)称样量 0.7760g 溶于水中并定容至 l00mL.(2)对照样品:比利时进口低聚果糖 GF2 至 GF6(企业标示量占总糖为92),准确
8、称取 0.5770g 溶于水中并定容至 l00mL.(3)样品及对照样品进样量分别为 25L.(4)用 HPLC 面积归一法验证对照样品低聚糖各组分面积值总和:418326;及各组分占固形物(总糖)的百分含量:93.99%.(5)用 HPLC 面积归一法计算样品低聚糖各组分面积值总和:417532(6)样品 中低聚果糖的百分含量:低聚果糖%=六,注释1.低聚糖(Oligosaccharide)或称寡糖,是由 310 个单糖通过糖苷键连接形成直链或支链的低度聚合糖,现已广泛应用在饮料,奶类,果冻,谷类制品,婴幼儿食品等保健食品中.2.低聚果糖或异麦芽低聚糖是由酶将蔗糖(或淀粉)水解为果糖与葡萄糖
9、或麦芽糖与葡萄糖以国产低聚果糖为例其结构式 GFFn,(n=13),GF 为蔗糖(由G 代表葡萄糖,F 代表果糖构成),GF2 即一分子葡萄糖和二分子果糖称蔗果三糖,GF4 称蔗果五糖.3.低聚糖难得纯品,因酶反应产物中除各种蔗果糖外,还残留下不少葡萄糖,果糖和蔗糖(或麦芽糖);另经有关文献检索,低聚糖亦未见有准确的定量方法,其原因是低聚糖的分离其响应因子依赖于分子内部链的长短,故准确定量较难,本方法是根据自己的实践,采用强化在保健食品中的基料作对照样,而建立的新方法. 4.两种低聚糖(低聚果糖,异麦芽低聚糖)共存于同一食品中,低聚糖各组分用以上的分离条件难以分开,表现为许多组分重叠,干扰了正
10、常定量,但将两组色谱图叠加进行比较,异麦芽三糖为一独立峰,因而可以用其对异麦芽低聚糖进行定量分析.把两组对照样色谱图中低聚糖各组分的峰面积相加,得出总的峰面积,再求出其中低聚果糖所占的百分比,求出一个校正因子(注意:一定要换算成相同的浓度单位).从样品色谱图中把低聚糖各组分总的峰面积乘以其百分比就可求出低聚果糖的含量(但要注意样品中含其他糖如蔗糖的干扰).5.食品的化学构成比较复杂,某些功能性食品在生产工艺过程中会带来杂质和赋形剂及其中一些组分(如淀粉,麦片,豆粉)的变性而干扰本法的测定,故在样品处理中应尽量去除并参考 6.(4)的定量方法;6.本法也适用于其他低聚糖的测定.第二节 大豆异黄酮
11、的测定方法一,大豆总异黄酮的测定方法(紫外分光光度法)本方法适用于大豆以及大豆制品中大豆总异黄酮的测定(所测样品需要进行前处理).1. 方法提要将金雀异黄素标准品及含有大豆制品的样品溶液在分光光度上扫描 200400nm吸收情况,结果发现,标准品及样品的最大吸收峰都在 259nm,且最大吸收峰周围干扰较少.因此,选用金雀异黄素作为标准品,利用紫外分光光度法测定大豆总异黄酮的含量.2. 仪器紫外分光光度计.3. 试剂(1)金雀异黄素(C12H10O5)标准品(美国 Sigma 公司,含量为 99.999%).(2)95%乙醇(C2H6O)(分析纯),天津化学试剂厂生产.(3)双蒸馏水(H2O),
12、自制.(4)石油醚(沸程为 6090)(分析纯),上海化学试剂厂.(5)环己烷(C6Hl2)(分析纯),上海试剂一厂.(6)标准品溶液:准确称取金雀异黄素(geninstein)标准品 5.2mg,置人 50ml 容量瓶中,以 95%乙醇溶解,并定容至刻度,摇匀.4. 测定步骤(1)样品处理:精密称取大豆总异黄酮纯化物 10.4mg,置入 50mL 容量瓶中,以 95%乙醇溶解,并定容至刻度,摇匀.(注:样品为经大孔吸附树脂吸附纯化并配合溶剂法提取制得的大豆总异黄酮提取纯化物,浅黄棕色粉末,味苦).(2)标准曲线的绘制:准确吸取 0.05,0.1,0.15,0.2,0.3,0.4mL 标准品溶
13、液分别置于 10mL 容量瓶中,并各加 95%乙醇 1.0mL,再加蒸馏水稀释至刻度,摇匀.以lmL95%乙醇加水到 l0mL 作空白对照,在 259nm 处测得吸光度,以测得之吸光度与纯品量绘制标准曲线并得出回归方程见表 281.计算公式:回归方程 y = ax + b 相关系数 r = 0.9996式中 b截距,0.2006;d斜率,7.8118.表 281 标准曲线与回归方程编号123456x/g0.521.041.562.083.124.16y0.04320.10800.17630.27350.36540.5131(3)样品测定:分别准确吸取样品液 0.3mL 于 3 只 10mL 容
14、量瓶中,以下按标准曲线制备项下操作,在 259nm 处测定吸收度,计算平均值,按标准曲线方程计算含量,并计算样品的大豆总异黄酮质量分数.结果见表 282.表 282 样品中的大豆总异黄酮含量 编号123吸光度/OD0.28370.28370.2795平均吸光度/OD0.2835含量/(g/mL)8.04525. 精密度实验准确吸取标准品溶液 0.2mL,分别置 5 只 10mL 容量瓶中,按标准曲线项下操作,测定吸收度,计算相对标准差(RSD)为 2.6%.6. 加样回收率实验准确吸取 0.1,0.2,0.2,0.2,0.1mL 标准品溶液于 5 只 l0mL 容量瓶中,再分别准确加入样品液
15、0.3mL,照标准曲线制备项下操作,计算加样回收率,结果见表 283.表 283 加样回收率实验12345平均 RSD/%加标准品质量/g1.042.081.042.082.080.3mL 样品中相当金雀黄素的量/g2.41492.41492.41492.41492.4149OD 值0.36650.49650.49320.49880.3625测得相当金雀黄素的含量/g3.46794.49214.46634.50463.4489回收率/%101.2599.8798.63100.4799.08平均回收率/%99.861.067. 结果计算样品中大豆总异黄酮的百分含量(以金雀异黄素计算)按稀释度和金
16、雀异黄素标准曲线的相应量计算.8. 注释 若受试物为大豆的制品,如水豆腐,干豆腐,豆芽,豆豉等可采用食品粉碎机破碎后冷冻干燥,分别取干重为 l0g 的受试样品置于锥形瓶中,加入石油醚 50mL,放置 24h,过滤,残渣用滤纸筒包好,置于水浴上的索氏提取器中用甲醇提取 6h,注意温度低于 70.提取液回收甲醇,残渣上大孔吸附树脂柱,用水洗脱除去糖类成分,续以 95%的乙醇洗脱,将乙醇洗脱液浓缩,干燥,以 95%乙醇定容为 25mL.豆浆,豆汁等液体大豆饮品可在 60水浴上蒸干,取干重为 10g 的干燥物与干燥后的水豆腐等一样处理,得到不同的样品 95%乙醇溶液.二,大豆异黄酮的测定方法(高效液相
17、色谱法)本方法适用于大豆制品中大豆异黄酮的测定.本方法大豆异黄酮染料木素的最低检出限为 10ng;大豆苷元的最低检出限为30ng.1. 方法提要大豆异黄酮(soybean isoflavones,简称 ISO)是一类从大豆中分离提取的具有抗氧化,抗肿瘤,改善心血管功能的主要活性成分.目前发现的大豆异黄酮包括游离型苷元和结合型的糖苷两类共有 12 种,染料本素(Genistein,G)和大豆苷元(Daidzeiu,D)是其中两种重要化合物.本法用 80%乙醇作为溶剂,提取样品中的染料木素,大豆苷元,以反相高效液相色谱分离,在紫外检测器 260nm 条件下检测其峰面积,以染料木素和大豆苷元两项含量
18、之和计算大豆异黄酮含量.2. 仪器(1)LC 高效液相色谱仪,CRIB 色谱处理机.(2)检测器:SPD2AS 紫外检测器.(3)离心机.(4)超声波振荡器.3. 试剂(1)甲醇(色谱纯).(2)乙醇(优级纯).(3)双重蒸馏水.(4)大豆异黄酮标准品:染料木素与大豆苷元标准品(美国 Sigma 公司产品),以染料木素的大豆苷元两项之和作为大豆异黄酮含量计算.(5)大豆异黄酮标准溶液:准确称取染料木素标准品 5.0mg,大豆苷元标准品3.2mg,各自用流动相“甲醇+水(60+40)“定容至 100mL,配制成 50g/mL 的染料木素和 32g/mL 的大豆苷元标准溶液.4. 测定步骤(1)样
19、品处理:a. 固体样品:准确称取一定量固体粉末样品于 100mL 容量瓶中,定量加入 80%乙醇,经超声振荡 5min,加水补足至刻度,待提取液略澄清后经离心分离(3000r/min,5min),取上清液经 0.45m 滤膜过滤后待进样.b. 液体样品:准确吸取 2.0mL 液体样品,加入 80%乙醇摇匀并定容 100mL,澄清后同上述步骤.(2)色谱分离条件:色 谱 柱:ShimPack CLCODS,6mm l50mm,5m.流 动 相:甲醇+水(60+40),临用前用超声波除气.流 速:05min,为 1.0mL/min;510min 为 1.6mL/min.柱 温:40.检测波长:UV
20、260nm.灵 敏 度:0.016AUFS.进 样 量:l0L.(3)样品测定:准确称取样品处理液和标准液各 l0L(或相同体积)注入高效液相色谱仪进行分离,以其标准溶液峰的保留时间进行定性,利用峰面积求出样液中待测物质的含量.5. 结果计算式中 X样品中染料木素/大豆苷元的含量(g/g);S1样品峰面积;c 标准溶液浓度(g/mL);S2标准溶液峰面积;V样品定容体积(mL);m 试样质量(g).样品中大豆异黄酮含量 X(g/g)=Xg+Xd(Xg,Xd 分别为样品中染料木素及大豆苷元的含量)6. 注释(1)本法染料木素浓度在 0.010.1mg/mL 范围内呈直线关系,相关系数为0.999
21、6;大豆苷元浓度在 0.0030.03mg/mL 范围内呈直线关系,相关系数0.9945.(2)精密度:同一样品依本法重复 6 次,染料木素,大豆苷元的相对标准差(RSD)分别为 3.1%及 1.2%.(3)回收率:依本法各取试样 9 份,每 3 份为一组,分别加入不同量标准品进行试样处理,染料木素添加回收率为 95.0%103.7%,大豆苷元添加回收率为95.8%105.5%.第三节 总皂苷的测定方法(分光光度法)本方法适用于功能性食品中总皂苷的测定.本方法人参皂苷 Re 的最低检出量为 2g/mL.一,方法提要样品中总皂苷经提取,PT大孔吸附树脂柱预分离后,在酸性条件下,香草醛与人参皂苷生
22、成有色化合物,以人参皂苷 Re 为对照品,于 560nm 处比色测定.二,仪器 1.722 分光光度计.2.PT大孔吸附树脂柱(河北省津杨滤材厂).3.超声波振荡器.三,试剂1.甲醇(分析纯).2.乙醇(分析纯).3.人参皂苷 Re 标准品(中国药品生物制品检定所).4.5%香草醛溶液:称取 5g 香草醛,加冰乙酸溶解并定容至 l00mL.5.高氯酸(分析纯).6.冰乙酸(分析纯).7.人参皂苷 Re 标准溶液:精确称取人参皂苷 Re 标准品 20.0mg,用甲醇溶解并定容至 10mL,即每 1mL 含人参皂苷 Re2.0mg.8.重蒸水.四,测定步骤1.样品处理:(1)固体样品称取 1.0g
23、 左右样品于 100mL 烧杯中,加入 2040mL 85%乙醇,超声波振荡 30min,再定容至 50mL,摇匀,放置,吸取上清液 1.0mL 挥干后以水溶解残渣,进行柱分离.(2)液体样品含乙醇的酒类样品:准确吸取 1.0mL 样品放于蒸发皿中,蒸干,用水溶解残渣,用此液进行柱层析;非乙醇类液体样品:准确吸取 1.0mL 样品(如浓度高或颜色深,需稀释一定体积后再取 1.0mL)直接进行柱分离.2.柱层析以 PT大孔吸附树脂柱进行层析分离,准确吸取上述已处理好的样品溶液 1.0mL上柱,用 15mL 水洗柱,以洗去糖分等水溶性杂质,弃去洗脱液,再用 20mL85%乙醇洗脱总皂苷,收集洗脱液
24、于蒸发皿中,于水浴上蒸干,以此作显色用.3 显色在上述已挥干的蒸发皿中准确加入 0.2mL 5%香草醛冰乙酸溶液,转动蒸发皿,使残渣溶解,再加 0.8mL 高氯酸,混匀后移入 l0mL 比色管中,塞紧盖子于 60以下水浴上加温 15min 取出,冷却后准确加入冰乙酸 5.0mL,摇匀后以 1.0cm 比色皿,于 560nm 处与人参皂苷 Re 标准管同时比色.4 标准曲线的绘制:吸取人参皂苷 Re 标准溶液(2.0mg/mL)0,20,40,60,80,100L(相当于人参皂苷Re0,40,80,120,160,200g),于 10mL 比色管中,用氮气吹干,同 4.(3)显色步骤测定吸光度.
25、并绘制标准曲线.人参总皂苷浓度为 20200g/mL 之间与吸光度值呈线性关系,相关系数(r)0.999.五,结果计算式中 X样品中总皂苷(以人参皂苷 Re 计)(g/kg 或 g/L);m试样质量或试液体积(g 或 mL);V1样品提取液总体积(mL); V2样品提取液测定用体积(mL);m1从标准曲线查得待测液中人参皂苷 Re 量(g).六,注释1.人参系五加科植物是人参 Panax ginseng C A Meyer 的根,含有多种人参皂苷(ginsenoside),多数为达玛烷型皂苷,如人参皂苷 Ral,Ra2,Rbl,Rb2,Rb3,Re,Rd等;少数为齐墩果酸型(C 型)皂苷,如人
26、参皂苷 Re.由于苷元不同,达玛烷型皂苷又分为:20S原人参二醇类皂苷(A 型)和 20S原人参三醇类皂苷(B 型).其中,A 型和 B 型皂苷酸水解后,分别得到人参二醇(Panaxadial)和人参三醇(panaxatriol).除人参外,五加科的西洋参,三七,刺人参,刺五加和葫芦科的绞股蓝中亦含有与人参皂苷类似的化合物.当保健食品原料配方中含有上述多种原料时,即以本法“总皂苷(以人参皂苷 Re 计)“报告检测结果.2.对于人参,西洋参,绞股蓝纯品或以其为主要原料加工的保健食品,按中华人民共和国药典2000 年版一部第 99 页,以薄层色谱法进行鉴定试验,将受试品色谱与对照药材色谱及对照品色
27、谱进行比较确定其主要原料后,人参,西洋参制品仍以人参皂苷 Re 为对照品进行检测,而绞股蓝制品以绞股蓝总皂苷(中国药品生物制品检定所)为对照品进行检测,分别以“人参总皂苷“,“西洋参总皂苷“,“绞股蓝总皂苷“报告检测结果.3.回收率:90%105%.第四节 褪黑素的测定方法(高效液相色谱法)本方法适用于功能性食品中褪黑素片剂的测定,非添加褪黑素的天然食品可参照此法.本方法褪黑素的最低检出量为 25ng.一,方法提要样品中的褪黑素用甲醇提取后,经高效液相色谱分离,在紫外检测器上检测,波长260mm,用外标法定量,根据峰面积值计算样品中褪黑素的含量.二,仪器1.高效液相色谱仪(Waters2690
28、 型)带 996 型紫外线检测器.2.超声波振荡器3.离心机(5000r/min).4.微孔过滤器(滤膜 0.5m)三,试剂1.甲醇(色谱纯,含量99.9%).2.水(超纯水)3.褪黑素标准品(纯度 99.9%以上).4.褪黑素标准溶液:准确称取 10mg 褪黑素标准品于 10mL 容量瓶中,用甲醇定容.然后放置超声波振荡器中充分溶解,浓度为 1.000mg/mL.用移液管准确移取上述溶液 5mL 于 10mL 容量瓶,配制成浓度为 0.500mg/mL 的标准液.采用相同步骤分别配制浓度为 0.250,0.125,0.063mg/mL 的标准液.四,测定步骤 1.样品处理取一片样品(标示含
29、1mg 褪黑素),放入小乳钵中研磨成粉末状后倒入 5mL 离心管中,用甲醇冲洗乳钵 3 次,倒入离心管中,并定容至刻度.混匀后放入超声波振荡器中萃取 10min,然后离心 10min(5000r/min),把上清液移至 5mL 容量瓶中,用甲醇定容至刻度.混匀后经 0.5m 微滤膜加压过滤,滤液待上机测定.2.色谱分离条件色谱柱:NovaPakC18 柱 3.9mml50mm.流动相:甲醇+水(1+1). 波 长:260nm流 速:1.0mL/min进 样 量:10L3.标准曲线的绘制,将配制成的褪黑素标准液(0.063,0.125,0.250,0.500,1.000mg/mL)依次进样 10
30、L,测定各浓度相应的峰面积值,绘制标准曲线.回归方程:y=1.535110-6 x-2.741610-2 ,r=0.9991.线性范围:0.0631.000mg/mL4.样品测定取样品处理液 10L 注入高效液相色谱仪分离测定,以标准品峰的保留时间定性,并根据样品组分的峰面积在标准曲线上查出相应组分含量.五,结果计算X=式中 X褪黑素的含量(mg/100g);m1从标准曲线上查得相应的黑素的质量(g);V1样品定容总体积(L)V2进样量(L)M样品质量(g)第五节 肉碱(L Carnitine)的测定方法(高效液相色谱法)本方法适用于添加左旋肉碱的功能性食品中肉碱的测定.本方法肉碱最小检出量为
31、 1.82g.一,方法提要样品的水溶液用高效液相色谱法将左旋肉碱分离,经紫外检测器检测,测定出相应的峰面积,用外标或内标法定量.二,仪器1.BioRad700 高效液相色谱仪,UV-1706 紫外检测器.2.超声波振荡器. 3.微孔过滤器(滤膜 0.45m).三,试剂 1.甲醇:色谱纯(浙江黄岩化工实验厂).2.水:为三蒸水并经 MilliQ 超纯处理.3.离子对色谱试剂:IPRB7(庚烷磺酸钠C7H15SO3Na):天津市化学试剂二厂.4.磷酸(H3PO4):分析纯.5.氢氧化钠(NaOH):分析纯.6.左旋肉碱标准品:L4氨基羟基丁酸(C7H15NO3),由瑞士龙沙公司提供.7.对氨基苯甲
32、酸:C7H7NO2,分析纯:准确称取 100mg 对氨基苯甲酸用水溶解于100mL 容量瓶中,加水至刻度,配成 1mg/mL 的内标溶液(样品用);此液用水稀释10 倍为 0.1mg/mL(标准用).8.标准溶液:准确称取 25,50,75,100,125mg 的左旋肉碱标准品溶于流动相中,用流动相稀释至 25mL 刻度,配成每 1ml 的内标溶液(样品用);此液用水稀释至25mL 刻度,配成每 1mL 含 1.0,2.0,3.0,4.0,5.0mg 左旋肉碱.内标法:同上,但内含 0.1mg/mL 对氨基苯甲酸 5mL(最终浓度=0.02mg/mL).四,测定步骤1.样品处理(1)外标法准确
33、称取含左旋肉碱 500mg 左右的样品于 50mL 容量瓶中,加水约 40mL,置超声振荡器中 20min 助溶,冷却,用水稀释至放刻度,过滤,吸取 5mL.滤液于 25mL 溶量瓶中,用流动相稀释至刻度,经 0.45m 滤膜过滤,滤液备用.(2)内标法准确称取含左旋肉碱 500mg 左右的样品于 50mL 容量瓶中,加水约 40mL,及 5mL (1.0mg/mL)对氨基苯甲酸,置超声振荡器中同上处理.2.色谱分离条件色谱柱:BIO-RAD BIOSIL OBS.10 250mm4mm.流动相:吸取 2.5mL 磷酸于 475mL 水中,加入 25mLlmol/L NaOH 摇匀,调整 pH
34、2.4,再加入 50mg 庚烷磺酸钠(B7),溶解后加入 260mL 甲醇.紫外检测器检测波长:2l0nm.流 速:1mL/min灵敏度:0.00l.进样量:20L3.标准曲线的绘制分别准确吸取以上各种浓度的标准溶液和样品滤液 20L 于 HPLC 中进行测定,记录各组分峰面积,以左旋肉碱的浓度为横坐标,左旋肉碱的峰面积(或与内标峰的面积比值)为纵坐标绘制标准曲线.左旋肉碱浓度在 1.05.0mg/mL,线性良好,线性回归方程 y=-0.0086+0.1061x,相关系数 r=0.9997.4.样品测定准确吸取样品滤液 20L 于 HPLC 中,并根据样品组分的峰面积(或与内标峰的面积比值)在
35、标准曲线上查出相应的左旋肉碱的含量.五,结果计算X=式中 X左旋肉碱的百分含量(%);m1在标准曲线上查出相应的左旋肉碱质量(mg);n样品的稀释倍数;m样品质量(g);1000mg 换算成 g.六,注释1.关于标准品左旋肉碱(LCarnitine)极易吸水变潮,故称量时要注意标准品是否干燥,如潮解不能烘干再用,亦可选用左旋肉碱酒石酸盐(LCarnitine tartrate)或消旋肉碱盐酸盐(DLCarnitine hydrochloride)等作标准品,但要注意换算:如从LCarnitine tartrate 换算为 LCarnitine 要乘系数 0.682,从 LCarnitine 换
36、算为 LCarnitine tartrate 要乘系数 1.4655.用左旋肉碱酒石酸盐作标准品时,色谱图中在前面多出一个酒石酸盐的色谱峰.2.本法引自美国药典 U.S.PNF 1995(I),流动相只适用于含杂质较少的样品,如保健食品中配方复杂并添加了中草药,维生素及其他赋形剂等,可将流动相用水或 pH2.4 的磷酸盐缓冲液稀释 34 倍并适当添加离子对试剂的用量;如样品为口服液或饮料,流动相中水相(pH2.4 的磷酸盐缓冲液)与甲醇的比例可延至 98:2,庚烷磺酸钠可加至 555mg.3.左旋肉碱才具有生理活性.本法最大的缺点是不能将右旋和消旋的肉碱区分开.第六节 免疫球蛋白 IgG 的测
37、定方法(单向免疫扩散法)本方法适用于功能性食品中免疫球蛋白 IgG 的测定,其中 IgG 的最低检出限为20g/mL.一,方法提要在含有抗体的琼脂板的小孔中加入抗原溶液,经过扩散后,在小孔周围形成抗原体沉淀环,此沉淀环面积与小孔中的抗原量成正比.测定样品中 IgG 时,琼脂板中可加入适量的免抗牛 IgG 抗血清,琼脂板各小孔中分别是加入一系列的己知 IgG含量的对照标准品及适量稀释的待测 IgG 乳粉样品,经过 24h 扩散后,测量各沉淀环直径.以 IgG 标准品系列浓度为横坐标,沉淀环直径的平方为纵坐标绘制标准曲线,根据待测 IgG 样品形成的沉淀环直径查标准曲线得到对应的 IgG 浓度即可
38、计算其含量.二,仪器1.琼脂模板由二块 7.5cm18cm 玻璃板中间隔放一块有机玻璃 U 形板(厚 0.22cm,各边宽lcm,底边长 18cm,底边长 18cm,两边长 7.5cm)构成,用弹簧夹紧.2.打孔器, 2.5mm.3.湿盒:有盖搪瓷盘,盘底铺垫纱布 34 层,用 0.5%苯酚溶液浸湿纱布.4.微量进样器.5.水浴锅.三,试剂1.pH6.8 磷酸盐缓冲液:称取分析纯的磷酸氢二钾 6.8g 和氢氧化钠 0.94g,加蒸馏水溶解并稀释至 1L,混匀.2.优质琼脂.3.兔抗牛 lgG 抗血清(生化试剂):效价为 1:32.4.牛 IgG 对照标准品(生化试剂): Sigma 公司提供.
39、四,测定步骤 1.抗体琼脂板的制备在 pH6.8 磷酸盐缓冲液中加入 1.0%琼脂,加热溶化,冷却到 55,并在 55水浴中保温,然后加入抗牛 IgG 抗血清(效价为 1:32,添加量为体积的 1/80),迅速混合后倒入琼脂模板内.待琼脂凝固后(需 1015min),将上面的玻璃板小心取去,再取去 U 形板,用打孔器相隔 1.5cm 打孔一个,并挑出孔内琼脂块.2.标准曲线绘制取牛 IgG 对照标准品,以 pH6.8 磷酸盐缓冲液溶解,分别稀释配成浓度为0.05,0.10,0.20,0.40,0.80,1.00mg/mL 的系列标准溶液.然后,将上述对照标准溶液分别加入抗体琼脂板的小孔中,每小
40、孔 5L(双样).加样后将琼脂板放入湿盒中,在 37 放置 24h,取出,准确测量沉淀环直径以牛 IgG 浓度为横坐标,沉淀环直径平方为纵坐标绘制标准曲线.3.样品中 IgG 含量的测定根据样品中 lgG 含量高低称取适量样品,用 pH6.8 磷酸盐缓冲液溶解并适当稀释,然后按标准曲线操作步骤在抗体琼脂板小孔中加样,扩散,测量沉淀环直径,根据标准曲线查得样品中相应 1gG 浓度,并计算样品 IgG 含量.说明:观察结果时,可于暗室内,以台灯斜照琼脂板,背后用黑纸作背景,琼脂板玻璃面朝向观察者,将透明厘米尺紧贴玻璃板,测量沉淀环的直径.五,注释1.免疫球蛋白(Immunoglobulin,Ig)
41、对增强机体的免疫抗病能力已早为人知.近年来,随着 IgG 应用于功能性食品的研究,发现 IgG 在调节动物体的生理功能,如改善胃肠道功能(调节肠道菌群),促进生长发育等方面起重要作用.有关测定IgG 的方法,目前国内外有:电泳法,免疫荧光技术,放射免疫法,高效液相色谱法等.本文介绍的单向免疫扩散法是一种经典方法,设备简单,方法易于推广.2.本方法在 IgG 浓度为 0.051.0mg/mL 范围内呈线性关系,对于含有初乳素的奶粉,奶片,胶囊,羊胎素均可测定.第七节 EPA 和 DHA 的测定方法(气相色谱法)本方法适用于以鱼油为主要成分的功能性食品中 EPA 和 DHA 检测,其中 EPA 的
42、最低检出量为 20g/mL,DHA 的最低检出量为 60g/mL.一,方法提要样品经三氟化硼甲醇甲酯化后,用正己烷提取,经 DEGS 气相色谱柱分离,并附氢火焰离子化检测器测定,用相对保留时间定性,与标准系列的峰高比较定量.二,仪器1.气相色谱仪:附氢火焰离子化检测器.2.超级恒温水浴:精度(0.1 ).3.Eppendorf 管(EP 管):0.51.0mL.三,试剂所用试剂除注明者外,均为分析纯;水为重蒸馏水.1. 0.5mol/L 氢氧化钠甲醇溶液:称取 2.0g 氢氧化钠溶于少量无水甲醇中,并稀释定容至 l00mL.2. 饱和氯化钠溶液:称取 72g 氯化钠溶解于 200mL 蒸馏水中
43、.3. 三氯化硼甲醇溶液:量取浓度约为 47%三氯化硼乙醚溶液 30mL,加入到 75mL无水甲醇中,混匀.4. 正己烷.5. 甲醇:优级纯.6. EPA 和 DHA 的甲酯标准储备液:采用 Sigma 公司标准品(cis5,8,11,14,17Pentaenoic Acid Methyl Ester,Approx.99%,cis4,7,10,13,16,19 Docosahxaenoic Acid Methyl Ester,Approx.98%).准确称取0.050gEPA 和 0.100gDHA 用正己烷溶解,并定容于 10mL 容量瓶,此标准储备液EPA 浓度为 5.0mg/mL,DHA
44、 浓度为 10.0mg/mL.(7)FPA 和 DHA 的甲酯标准使用液:将标准储备液用正己烷稀释成 EPA 浓度为1.00,2.00,3.00,4.00,5.00mg/mL, DHA 浓度为2.00,4.00,6.00,8.00,10.00mg/mL.四,测定步骤1.样品处理准确吸取 1020L 鱼油于 10mL 具塞比色管中,加入 0.5mol/L 氢氧化钠甲醇溶液 2mL,充氮气,加塞,于 60水浴中(约 10min)至小油滴完全消失.加入三氯化硼甲醇溶液 2mL 和正己烷 0.5mL,充分振荡萃取,静置分层.取上层正己烷液于 EP管中,加少量无水硫酸钠,充氮气,于 4 冰箱中保存,备色
45、谱分析.2.色谱参考条件色谱柱:玻璃柱或不锈钢柱,内径 3mm,长 2m.内充填涂以 8%(质量分数)DEGS+1%(质量分数)H3PO4 固定液的 6080 目 Chromosorb W. AW. DMCS.气体流速:载气 N2 50mL/min(氮气和空气和氢气之比按各仪器型号不同选择最佳比例).温度:进样口 210 ,检测器 21 0,柱温 190.进样量:1L.3.标准曲线的绘制用微量进样器准确取 lL 标准系列各浓度标准使用液注入气相色谱仪,以测得的不同浓度的 EPA 和 DHA 的峰高为纵坐标,浓度为横坐标,绘制标准曲线.4.样品测定准确吸取 1L 样品溶液进样,测得的峰高与标准曲
46、线比较定量.五,结果计算X=V2V1式中 X样品中 EPA,DHA 的含量(mg/100g);ml测定用样品液中的质量(g);m样品的质量(g);Vl加入正己烷的体积(L)V2测定时进样的体积(L)EPA 和 DHA 回收率分别为(96.23)%和(95.84)%,精密度相对标准差分别为1.86%和 2.11%.六,注释1.二十碳五烯酸(allc is5,8,11,14,17 eicosapenoic acid EPA)和二十二碳六烯酸(allc is4,7,10,13,16,19 Docosahexaenoic acid DHA)为超长链不饱和脂肪酸,具有预防血管疾病,降低血脂,抗癌,抗过敏
47、等作用,因此鱼油制品被广泛应用于医药及保健食品中.2.鱼油制品用三氟化硼甲醇溶液酯化.并采用充填 8%DEGS+1%H3PO4 固定液的色谱柱分离,克服了样品中其他物质的干扰,显示出良好的准确度和精密度.3.本法同时可以适用于测定油酸,亚油酸和亚麻酸.色谱条件:柱温 160 ,进样口及检测器 190,其他条件(包括样品处理)与本法相同.超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase,简称 SOD)的测定方法本方法适用于以各类鲜活的动植物组织器官及初加工品(如生鱼片,动物血等初加工肉制品),乳制品,各类水果蔬菜,果汁等食品中超氧化物歧化酶活性的测定.超氧化物歧化酶是催化以下反应的金属酶
48、,O+O+2H+ H2O2+O2测酶活方法很多,本文介绍氮蓝四唑法与连苯三酚氧化法.一,氮蓝四唑法 1.方法提要在电子供体如甲硫氨酸存在下,核黄素受光激发,与电子供体反应被还原.在氧气中,还原的核黄素与氧反应产生 O,O 将无色(或微黄)的氮蓝四唑还原为蓝色,SOD 通过催化 O 歧化反应,生成 O2 与 H2O2,从而抑制蓝色形成.按抑制蓝色物形成的 50%为一酶活单位.酶活力越高,抑制 50%蓝色形成所需酶量越少.2.仪器荧光灯管.离心机.分光光度计pH 计.3.试剂(1)磷酸氢二钾(K2HPO43H2O),磷酸二氢钾(KH2PO4),甲硫氨酸(Met),氮蓝四唑(NBT),核黄素,乙二胺
49、四乙酸(EDTA),以上试剂均为分析纯级;所用水为去离子水或同等纯度蒸馏水.(2)pH7.8,5.010-2mol/L 的 K2HPO4-KH2PO4 缓冲液(于冰箱中保存)4.测定步骤 (1)酶液的制备:称取 510g 样品,加预先在冰箱中放置的上述 K2HP04KH2PO 4 缓冲液,缓冲液的量为所用样品的 10 倍以上,在 4条件下或冰浴中研磨成匀浆,四层纱布过滤,滤液经 4000r/min 离心 20min,取上清液用于酶活测定.(2)酶反应体系液的制备:取上述 K2HPO4KH2PO4 缓冲液 30mL,依次溶入Met,NBT,核黄素与 EDTA,使它们的浓度分别为 1.3X10-2mol/L,6.3 10-5mol/L,1.3 10- 6mol/L 与 110-
