1、 封面2前言医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订检验标本采集运输指南手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。宾阳县人民医院检验科、护理部、感染管理科2016 年 8 月 4 日3目 录第一部分检验科各检测项目标本采集要求4第二部分检验标本采集运输要求5第三部分患者采血前
2、的准备6第四部分检验标本采集运输作业指导书6一、静脉血液采集运输作业指导书6二、末梢血采集运输作业指导书8三、动脉血液采集运输作业指导书9四、尿液标本采集运输作业指导书.10五、粪便标本采集运输作业指导书.11六、前列腺液采集运输作业指导书.11七、精液采集运输作业指导书.12八、脑脊液标本采集运输作业指导书.13九、浆膜腔积液（ 胸水） 采集运输作业指导书.14十、浆膜腔积液（ 腹水） 采集运输作业指导书.15十一、骨髓采集运输作业指导书.16十二、临床微生物标本采集运输作业指导书.18第五部分标本采集运输流程.20第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程.211 . 检验标本的接收标准:21
3、2 . 不合格标本拒收标准:213 . 检验标本接收流程:224 . 不合格标本拒收流程:234第一部分 检验科各检测项目标本采集要求项目 容器规格（头盖颜色） 标本量 备注生化项目（肝功、肾功、电解质、心肌酶学、血脂、血糖、特定蛋白组合、超敏 C 反应蛋白、胰腺炎组合、血淀粉酶、结核抗体等）普通管（红色）3-5ml免疫项目（五项检查、乙肝六项、乙肝两对半（定量） 、甲型、戊型肝炎病毒抗体检测、EB 、肿瘤标志物、性激素六项、甲功五项、HCG、孕酮等）普通管（红色） 3-6ml优生九项、产前筛查、免费三项、ANA 谱、肥达氏反应等普通管（红色） 4-6mlHBV-DNA 普通管（红色） 2ml
4、凝血四项、D2 聚体 柠檬酸钠 9：1（蓝色） 准确抽血至刻度（需混匀）血沉 柠檬酸钠 4：1（黑色） 1.6ml 准确抽血至刻度（需混匀）血液流变学 肝素钠抗凝（绿色） 5ml 不能少于 5ml（需混匀）血常规+ 血型、地贫基因检查EDTAK2 抗凝（紫色） 2-3ml （需混匀）地贫筛查、微量元素检测肝素钠抗凝（绿色） 1-2ml （需混匀）HPV、CT、NG、UU、HSV专用管（加分泌物）血培养 专用血培养瓶（蓝色、绿色为成人、黄色为儿童瓶）成人：5ml；儿童：2-5ml到微生物室领专用血培养瓶尿常规 尿杯 留取半杯 到检验科一楼 6 号窗5至少 15ml 领尿杯大便常规 试管 指头大小
5、3-5 克到检验科一楼 6 号窗领试管脑脊液、胸腹水常规+ 生化干净试管 2-5ml 迅速送检第二部分 检验标本采集运输要求1.标 本 采 集 要 求1.1 采集标本时所需要的与生物安全防护水平相适应的设备。执行标本采集的所有步骤都必须戴手套、穿工作服，需要的话，戴防护口罩和防护眼镜。1.2 采集标本的人员为具有掌握相关专业知识和操作技能的工作人员。执行采集标本的工作人员应具有国家承认的相应的资格，以保障标本采集的质量和安全性。1.3 所有标本均应视为具有潜在感染性。使用过的采集工具应按相关规定严格处理，严 禁外流。1.4 标本容器：1.4.1 标本容器可以是玻璃制品，或使用塑料制品。标本容器
6、应当坚固，正确地用盖子或塞子盖好后应无泄漏。1.4.2 在容器外部不能有残留物。1.4.3 容器上应当正确地粘贴标签（标本信息条形码）以便于识别。1.4.4 各类标本要按项目选择相应的试管或容器，请参照“ 检 验 科 各 检 测 项 目 标 本 采 集 要 求”表格内容来选择，标本不符合要求的，检验人员有权拒收。1.5 检验标本的采集必须严格按照本指南的操作规程进行，注意输液时不能在输液手臂 的同侧抽血。1.6 采集标本所用材料的安全处置：使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入利器盒内进行安全处置，禁止对使用后的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物，注射器针筒、棉
7、签等其它医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废弃。2.标 本 运 输 要 求2.1 所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。实验室内所有送检的标本应使用符合安全的容器送检，容器应当符合防水、防破损、防外泄等要求，容器外层应有可标识的部分。不能将泄漏的标本容器运至实验室或进行标本处理。如果要继续进行标本处理，要通知医生关于容器泄漏的情况，告知如继续操作可能对结果带来偏差，并要求重新送检。待接收新标本后，则对泄漏的标本进行高压灭菌或消毒处理后按感染性废物处理。2.2 标本应置于安全、防漏的容器中
8、运输。所有标本应视为具有生物危害的物品，运输时标本应置于安全、防漏的容器中6运输， 严防标本破损泄漏。运送标本时，应确认标本容器的盖子严密，避免标本外溢造成污染。 除血气分析外，不能将带针头的注射器直接送检，其内容物应移至无菌管内或用保护性装置移去针头，重新盖上容器盖子后方可送检。全血、血清、血浆等应使用专用一次性真空采血管采血；尿液、粪便、胸腹水等其它体液应置于专用容器送检；做微生物学检验的标本应置于无菌管中送检，做厌氧菌检验的标本应置于无菌厌氧管中送检，并避免污染。第三部分 患者采血前的准备1.一般要求：病人在采血前 24h 内应避免运动和饮酒，不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。静脉血标本采集最
9、好在起床后 1h 内进行。采血时间以上午 79 时较为适宜。门诊病人提倡静坐 15 分钟后再采血。2.采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对固定采血时间，尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。一般以清晨空腹抽血为宜（急症项目除外） 。3.患者体位：有些血液成份存在立位与卧位之间的差异，为减少这种影响，抽血病人的体位应相对固定。一般采用坐位取血，而且抽血前应让病人有 10 分钟的时间稳定自己的情绪及体位。4.剧烈运动的影响：激动的情绪会影响到一些血液成份浓度的变化，抽血的当晨病人不宜做剧烈的运动，避免情绪激动，抽血前应有 10 分钟的休息。因运动能影响许多项目的测定结果。活
10、动的影响可分暂时性和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使 CK、LDH、ALT、AST 和GLU 等的测定值升高，有些恢复较慢，如 ALT 在停止运动 1h 后测定，其值仍可偏高3050。5.输液的影响：由于边输液边采血影响血液成份的测定，规定输液时应在输液的另一侧手臂抽血，应尽可能避免在输液的同时进行采血。6.生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，抽血前几日应注意避免。多数试验要求在采血前禁食 12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。7.生理差别的影响：不同年龄组的个
11、体及妇女的妊娠期、月经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。8.葡萄糖耐量测定：试验前三天正常饮食，试验当日清晨空腹抽血2ml。将75克葡萄糖溶于300ml 温水中嘱病人在5分钟内一次服下，立即记录时间；然后分别在服糖后60、120、180分钟，各抽血2ml，注明管号、时间，立即送检。9.注意药物的影响：很多药物（如咖啡因、冠心平、维生素C、避孕药等）入人体后可使某些检测项目结果增高或降低，故患者在检验前应尽可能停止服用对检验结果有影响的药物（注意查看说明书） 。血样采集应在不服药期间，如7在早晨服药前。第四部分 检验标本采集运输作业指导书一、静脉血液采集运输作业指导书1.目的：
12、抽取静脉血标本以做各项检验。2.适用范围：适用于检验科做生化、免疫、血细胞分析、凝血、血液流变学、血沉、血红蛋白分析、血培养等项目所需血液标本的采集。3.物品准备：止血带、无菌棉签、复合碘消毒液、一次性采血针、负压真空管或血培养瓶、试管架、手消毒液、利器盒、手套、口罩等。4.检验申请项目要求：4.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。4.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 护士核对医嘱后，打印条形码并贴在采血试管上，采血前应核对患者姓名、床号、采血试管条形码等信息，明确检验项目，标本要求及需血量。5.2 向受检者解释操作目的，以取得合作。选
13、择采血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。5.3 在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。5.4 用茂康碘棉签消毒穿刺部位。5.5 在静脉穿刺部位上方 6 厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。5.6 穿刺:推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，采血完毕，松开止血带，嘱受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压 5 分钟，直到不再渗血。5.7 采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。6.标本运输步骤：6.1 标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午 11：
14、30 之前送达检验科，特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随抽随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，避免标本受热、破损，有必要时冷藏放置。6.2 标本运输前进行标本信息登记，以便检验科接收时进行核对。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 采血前应核对好患者姓名和检验项目，明确标本要求。选好采血管，采血管和采血量应参照“医学检验科各检测项目标本采集要求”表格内容。7.2 多项目检验时抽血顺序: 有血培养时:血培养
15、瓶抗凝管（凝血项目血细胞分析血流变血沉）非抗凝管；无血培养时:非抗凝管抗凝管（凝血项目血细胞分析血流变血沉） 。7.3 抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒 58 次，使血液与抗凝剂充分混匀，但不可用力震荡。87.4 一般生化、免疫检验用普通管（红色头盖）收集标本，采样量 35ml。若检验项目较多，应适当增加采样量。7.5 血细胞分析检验用 EDTA-K2（K3）抗凝管（紫色头盖）收集标本，采样量 2-3 毫升。凝血四项、D2 聚体（可用同一管血）用 3.2%柠檬酸钠 1:9 抗凝管（蓝色头盖）收集标本，采样量必须准确到刻度。血沉用 3.2%柠檬酸钠 1:4 抗凝管（黑色头盖）收集标本，抽血
16、 1.6ml。血液流变检查用肝素抗凝管（绿色头盖）抽血，必须抽足 5ml。7.6 采集血培养标本时尽量减少接触空气时间。血液培养的样品要采用无菌技术，防止污染。7.7 特别注意采血不能在输液的同侧进行，更应杜绝在输液管内采血，因输液成分会影响检测结果(使相应的结果偏高，如输 K+、Glu 时，可使所测 K+、Glu 明显增高)，或使血液稀释结果偏低。7.8 标本溶血常见原因:采血不熟练；注射器血急速注入试管；试管混匀用力过猛；从已有血肿的静脉采血；采血量不足后二次采血；穿刺处所用消毒液未干；注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生气泡；采血用针头过细；静脉穿刺不顺利等原因均会引起溶血，溶血会影响
17、部分检测项目的准确性。7.9 采静脉血时止血带压迫静脉时间不宜过长，以不超过 40 秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果，如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。7.10 避免食物的影响：用餐后，血糖、血脂结果明显升高，故一般应空腹抽血。有些食物成分如高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。7.11 药物影响：如异烟肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高，咖啡因可使胆红素增加。因此，建议检查前几天就停止使用有干扰的药物，血样采集应在不服药期间。8.附加检验项目申请：标本采集送出后如需附
18、加检验项目的，应在标本送检当天提出申请（可先电话通知） ，并补送附加的检验项目信息条形码到实验室。9.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。二、末梢血采集运输作业指导书1.目的：采集末梢血标本以做血细胞分析检验或血糖（干化学）等。2.适用范围：用于各种微量法检查或床旁检测。3.物品准备：一次性采血针、75%酒精、无菌棉球、微量采血吸管、(EDTA-K2抗凝管)、试管架、手消毒液、利器盒、编号笔、手套、口罩等。94.检验申请项目要求：4.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。4.2 急诊检验申请需选
19、带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 患者拿就诊指引单到检验科临检室，打印标本信息条形码；采血前应核对患者姓名、标本信息条形码内容，明确检验项目，标本要求及需血量；向受检者解释操作目的，以取得合作。5.2 采血前，采血医务人员彻底清洗和干燥双手，或使用一次性手套。5.3 受检者洗净双手，可反复揉搓准备采血的手指（常选择无名指） ，直至血运丰富；针刺前，应让手臂下垂 1015 秒，使指尖充血，毛细血管充盈。5.4 用 75%的酒精棉球消毒待检手指指腹，待干。5.5 采血者用拇指顶紧要被采血的指间关节,再用采血针紧挨指腹，在指尖一侧刺破皮肤。5.6 刺破皮肤后让血液自然流出，用消毒棉球
20、轻拭去第一滴后，轻轻推压手指两侧血管至指前端三分之一处，让血慢慢溢出，不要过分挤压，以免组织液挤出与血标本相混而造成检测结果偏差。5.7 做血细胞分析时将血液收集在 0.5 毫升离心管(EDTA-K2 抗凝管)，盖好离心管，轻弹底部混匀。做血糖（干化学）检测时，按相关检测规程操作。5.8 用干棉签压住穿刺部位，嘱采血对象按压 23 分钟，到不出血为止。6.标本运输步骤：末稍血标本主要用于门诊血细胞分析检验或床旁血糖（干化学）检测，一般不需要运输。如要运输到其他地方检验则应该在标本采集后应立即送检，如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，避免标本受热、破损，有必要时冷藏放置。
21、7. 注意事项：7.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。7.2 血细胞分析用 EDTA-K2（K3）抗凝管收集血标本后，盖好离心管，轻弹底部混匀，使血液与抗凝剂充分混匀。7.3 除特殊情况外，不要在耳垂采血。婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。烧伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。采血部位应无炎症或水肿。末梢采血不可用力挤压。8.其它：如分析失败，分析原因并告知受检者重新采样检验。三、动脉血液采集运输作业指导书1.目的：抽取动脉血标本，主要用做血气分析。2.适用范围：适用于血气分析所需血液标本的采集。3.物品准备：止血带、无菌棉签、复合碘消毒液、专用血气分析采样注射器、手消毒液、利器
22、盒、手套、口罩等。4.检验申请项目要求：104.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目进行申请。4.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 护士核对医嘱后，打印条形码并贴在专用血气分析采样注射器上，采血前应核对患者姓名、床号、标本信息条形码内容等信息，明确检验项目，标本要求及需血量。向受检者解释操作目的，以取得合作。5.2 选择血管，首先是桡动脉、肱动脉、足背动脉，必要时股动脉。5.3 用茂康碘棉签消毒穿刺部位。5.4 选择动脉搏动最强处 45 度或 90 度进针。5.5 穿刺：5.5.1 旋紧持针器上的针头，摘掉穿刺针上的保护套，试穿刺针是否通畅。5.5.2
23、 进行动脉穿刺，穿刺成功后，采集动脉血 11.5ml，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压 510 分钟，直到不再渗血。5.6 抽出后立即用一橡皮头封闭针头，隔绝空气，将注射器置于手中反复旋转搓动即达抗凝。5.7 在注射器上贴好样本信息条形码以做识别，条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。6.标本运输步骤：6.1 标本采集后应立即送检。6.2 标本运输前进行标本信息登记。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到 ICU。6.4 标本运送到 ICU 后，由工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 采血前应核
24、对好姓名和检验项目，明确标本要求。7.2 采血中注意隔绝空气，否则因空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血，从而使血液中 pO2 及 pCO2 发生都改变而无测定价值。7.3 立即送检，如暂时不能立即送检，应放入 28冰箱中冷藏，但最迟不能超过半小时必须送检，否则血细胞继续新陈代谢，影响数据准确。7.4 若必须静脉采血，可将手及前臂浸人 45温水中 20 分钟，使局部静脉血动脉化，穿刺时勿用压脉带，只能缓缓吸引。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室重新采样检验。四、尿液标本采集运输作业指导书1.目的：采集尿液标本以做尿液常规、
25、生化检验。2.适用范围：适用于检验科做尿液常规、尿 HCG、生化等项目所需尿液标本的采集。3.物品准备：一次性尿杯、试管、编号笔。4.检验申请项目要求：4.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。114.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 护士核对医嘱后，打印条形码；向受检者讲解标本留取方法及注意事项，以取得合作。门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。5.2 发一次性尿杯给受检者（门诊患者到 6 号窗领一次性尿杯） ，嘱受检者留取新鲜尿液标本，以清晨第一次中间段尿为宜。5.3 受检者按要求自己用一次性尿杯留取半杯
26、尿（至少 15ml） ，把标本放在指定存放区域。6.标本运输步骤：6.1 标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午 11：00 之前送达医学检验科，特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随留随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，但从留取至送检时间不宜超过 2 小时。6.2 标本运输前进行标本信息登记以便检验科接收人员核对接收。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：根据检测项目不同，尿液标本留取方法可分为晨尿、随机
27、尿、清洁中段尿等。7.1 晨尿：为住院病人留尿的主要方法，早晨起床后收集第一次尿，该标本为浓缩尿，其细胞和管型等形态完整，适合做尿常规检查，但留取至送检时间不宜超过 2 小时（尽量留取新鲜尿液为宜） 。7.2 随机尿：多为门诊和急诊病人的留尿检验方法，结果易受多种因素影响。应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检（静脉滴注大剂量青霉素、VitC 时可影响尿蛋白、尿糖及尿隐血结果，应尽量避免） 。7.3 清洁中段尿：用于尿培养检测，使用容器必须为无菌容器（由微生物实验室提供） 。尿液留取时，前段尿弃去，留取中段尿于无菌容器（试管）中送检。7.4 采集尿液标本应避免阴道分泌物、精液、粪便等污染，还
28、应注意避免烟灰、纸屑等异物混入。标本留取后应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解或被污染等。7.5 采集尿标本的容器应为清洁、干燥、有较大开口的一次性容器，患者从家里自留标本的容器必须无干扰化学物质(如表面活性剂、消毒剂)混入，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿收集标本。7.6 尿妊娠试验一般应取空腹晨尿送检。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。五、粪便标本采集运输作业指导书1.目的：采集粪便标本以做粪便常规和其他检验。2.适用范围：适用于医学检验科做粪便常规和其他检验项目所需粪便标本的采集。3.物品准备：专用一
29、次性杯或试管、编号笔。4.检验申请项目要求：124.1 检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。4.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 护士核对医嘱后，打印条形码；向受检者讲解标本留取方法及注意事项，以取得合作。门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。5.2 发一次性杯或试管一个给受检者，嘱受检者留取粪便标本一小时内送检。5.3 受检者按要求自己用一次性杯或试管留取粪便标本，把标本放在指定存放区域。6.标本运输步骤：6.1 标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午 11：00 之前送达检验科，特殊新入院患者酌情
30、延迟送检，急诊标本随留随送。如受各种条件限制，不能立即送检，应将标本放置于阴凉、稳妥处，但从留取至送检时间不宜超过 2 小时。6.2 标本运输前进行标本信息登记，以便实验室工作人员核对接收。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，粪便常规检验留取新鲜的自然排出的粪便 35g（指头大小） ，并注意选取粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部份） ；若无病理成分，可各部位取材。7.2 取标本时应注意粪
31、便的颜色与外观，如有异常应向医生叙述。采取标本后及时送检，否则可因 PH 及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。7.3 不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。7.4 粪便标本应不污染容器外表，应避免使用能吸收水份的容器。7.5 细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。7.6 稳血（或称潜血，OB）试验，应嘱患者收集标本前 3 天禁食动物性食物。服用铁剂、铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可
32、影响隐血测定应注意避免。7.7 隐血实验标本选取外表及内层粪便，连续检查 3 天，以免误诊，因为口腔黏膜及牙龈出血都可造成稳血试验阳性。7.8 无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便。灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而不适于作检查标本。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。六、前列腺液采集运输作业指导书131.目的：留取前列腺液标本以做各项检验。2.适用范围：适用于检验科做前列腺液分析各项目所需标本的采集。3.物品准备：洁净玻片或试管。4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。
33、5.标本采集步骤：5.1 采样者查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。5.2 由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内） ，第一滴弃去，立即送检。5.3 门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码；住院患者在送检标本时需附带标本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。6.标本运输步骤：6.1 标本应立即送检，涂片标本避免干燥。6.2 标本运输前进行标本信息登记以便检验科工作人员核对接收。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标
34、本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液。做培养用的标本应用无菌管采集。7.2 疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。7.3 一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔 35 天后重新复查。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者，必要时重新采样检验。七、精液采集运输作业指导书1.目的：留取精液标本以做各项检验。2.适用范围：适用于检验科做精液分析各项目所需精液标本的采集。3.物品准备：
35、专用洁净一次性尿杯。4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。5.采集操作步骤：5.1 查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。5.2 发一次性尿杯一个给受检者，自己采用手淫法取精液盛于尿杯内，送交检验室待检，样本送检时需附带样本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收；门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。6.标本运输步骤：6.1 留取标本后应立即送检，最迟存放不能超过半小时。如天气寒冷，应使标本保存于接近体温条件下送检。146.2 标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。
36、6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项7.1 精液采集最好在实验室附近，室温应控制在 2035，30 分钟内送检，采集标本前禁欲 37 天，采集精液前排净尿液。7.2 可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内。不能使用避孕套采集精液标本，避免避孕套中含有的某些杀死或抑精子活性的物质会影响检验结果。7.3 不能采用中断性交的方式采集精液标本，避免阴道分泌物影响检验结果。7.4 取出的精液必须全部盛于干净的容器内送检，以便准
37、确报告精液量。7.5 因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。一般应间隔 12 周检查一次，连续检查 23 次。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检者，必要时重新采样检验。八、脑脊液标本采集运输作业指导书1.目的：抽取脑脊液标本以做常规、生化、微生物学等项目检验。2.适用范围：适用于本科做常规、生化、微生物检验的脑脊液标本采集。3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、手消毒液、利器盒、手套、口罩、载玻片，试管及无菌管等。4.检验申请项目要求：4.1 检验申请项目必须按
38、检验系统内可选的项目或组合进行申请。4.2 急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。5.标本采集步骤：5.1 部位：5.1.1 以髂后上棘连线与后正中线的交点为穿刺点，相当于第 34 腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。5.2 方法：5.2.1 患者侧卧于硬板床，背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲，使躯干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。5.2.2 常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用 2利多卡因自皮肤到椎间韧带作局部麻醉。5.2.3 术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入，针尖稍斜向头部，成人进针深度约 46 厘米，儿童约 24 厘米。当针头穿
39、过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。5.2.4 放液前先接上测压管测量压力，正常侧卧位脑脊液压力为 70180mmH2O 或154050 滴每分钟。可作 Queckenstedt 试验，了解蛛网膜下腔有无阻塞。即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约 10 秒，再压另一侧，最后同时压双侧颈静脉。正常压迫静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后 1020 秒，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅。若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压力升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞。若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。
40、颅内压增高者，禁作此试验。5.2.5 撤去测压管，收集脑脊液 25ml 送检；脑脊液应采集三管，第一管用于细菌培养检查（无菌操作） ，第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。5.2.6 术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。5.2.7 去枕平卧 46 小时，以免引起术后低颅压头痛。6.标本运输步骤：6.1 脑脊液标本采集后应立即送检，在标本管（瓶）上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。6.2 标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。6.3 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，
41、所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.4 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项7.1 脑脊液标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。7.2 严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症，颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。7.3 穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并作出相应处理。7.4 鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。7.5 采集标本时应注意避免混入血
42、液，采集后立即送检(否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解)，化学检查标本宜用肝素抗凝。第二份作常规检查应避免凝固，必要时可用含有 EDTA-K2 抗凝剂的试管收集。如做细菌培养，应在用药前采集无菌标本。7.6 收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数标本应注意防止凝集。7.7 用于微生物检验的标本应注意保温，不可置冰箱保存。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室，必要时重新采样检验。九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书1.目的：抽取浆膜腔积液（胸水）标本以做各项检验。162.适用范围：适用于
43、本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（胸水）采集。3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、编号笔、手套、口罩。4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。5.标本采集步骤：5.1 部位：在胸部叩诊实音最明显的部位，一般取肩胛线或腋后线第 78 肋间，有时也可取腋中线第 67 肋间或腋前线第 5 肋间。5.2 方法：5.2.1 取坐位，两前臂置于椅背上，前额伏于前臂上；不能起床者可取半卧位，前臂上举抱于枕部。5.2.2 常规消毒，拿无菌手
44、套，覆盖无菌洞巾。5.2.3 用 2利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。5.2.4 术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针的三通活栓转到与胸腔关闭处，再将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，将三通活栓转至与胸腔相通，进行抽液。注射器抽满后，转动三通活栓使其与外界相通，排出液体。如用较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检, 作培养时应用无菌操作法留标本。5.2.5 抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱
45、布，稍用力压迫片刻，用胶布固定后嘱患者静卧。6.标本运输步骤：6.1 标本应立即送检，有条件的可低温条件 28运输，微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。6.2 送检标本应在标本管上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。6.3 标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。6.4 将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.5 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 浆膜腔积液（胸水）标本由临
46、床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。177.2 手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑，精神紧张者，可于术前半小时给地西洋10mg，或可待因 30mg 以镇静止痛。7.3 术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应，或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并皮下注射 0.1肾上腺素0.30.5ml 或进行其他对症处理。7.4 一次抽液不应过多，诊断抽液 50100ml 即可；减压抽液，首次不超过 600ml，以后每次不超过 1000ml；如为脓胸，每次尽量抽尽。7.5 严格无菌操作，操作中防止空气进入胸腔。7.6 收集标本后，为
47、防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知送检科室，必要时重新采样检验。十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书1.目的：抽取浆膜腔积液（腹水）标本以做各项检验。2.适用范围：适用于本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（腹水）采集。3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、编号笔、手套、口罩。4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。5.标本
48、采集步骤：5.1 部位：5.1.1 左下腹脐与骼前上棘连线的中、外 1/3 交点。5.1.2 脐与耻骨联合连线中点上方 1.0 厘米，偏左或偏右 1.5 厘米处。5.1.3 侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。此处常用于诊断性穿刺。5.1.4 少量积液，尤其有包裹性分隔时，须在 B 超指导下定位穿刺。5.2 方法：5.2.1 术前须排尿以防穿刺损伤膀胱。5.2.2 取坐位靠背椅上，衰弱者可取半卧位、平卧位或侧卧位。5.2.3 常规消毒，戴无菌手套，覆盖消毒洞巾，自皮肤至壁层腹膜以 2利多卡因作局部麻醉。5.2.4 术者左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针经麻醉处垂直刺入腹壁，待针尖抵挡感突然消失
49、时，示针尖已穿过壁层腹膜，即可抽取腹水，计量并留样送检。诊断性穿刺，可直接用 20ml 或 50ml 注射器及适当针头进行；大量放液时，可用 8 号或 9 号针，并于针座接一橡皮管接容器。并留取标本送检,做培养时应用无菌操作法留标本。5.2.5 放液后拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，以手指压迫数分钟，再用胶布固定。大量放液后，需束以多头腹带，以防腹压骤降。内脏血管扩张引起血压下降或休克。186.标本运输步骤：6.1 标本应立即送检，有条件的可低温条件 28运输，微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。6.2 送检标本应在标本瓶上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。6.3 标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。6.4 将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、患者或环境的方式运送到实验室。6.5 标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。7.注意事项：7.1 浆膜腔积液（腹水）标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。7.2 术中严密
