收藏 分享(赏)

西北大学学报(自然科学网络版).pdf

上传人:kuailexingkong 文档编号:1701682 上传时间:2018-08-18 格式:PDF 页数:6 大小:278.62KB
下载 相关 举报
西北大学学报(自然科学网络版).pdf_第1页
第1页 / 共6页
西北大学学报(自然科学网络版).pdf_第2页
第2页 / 共6页
西北大学学报(自然科学网络版).pdf_第3页
第3页 / 共6页
西北大学学报(自然科学网络版).pdf_第4页
第4页 / 共6页
西北大学学报(自然科学网络版).pdf_第5页
第5页 / 共6页
点击查看更多>>
资源描述

1、 西北大学学报 (自然科学网络版 ) 2005 年 5 月,第 3 卷,第 5 期 Science Journal of Northwest University Online May. 2005, Vo l. 3, No. 5 _ 收稿日期: 2004-09-08 基金项目: 陕西省教育厅专项基金资助项目( 01jk099) 审 稿 人: 孙悦迎,女,陕西省微生物研究所副研究员 转化法获被孢霉不饱和酸高产菌株 孙继民,王卫卫,熊本涛,侯小娟 (西北大学 生命科学学院 , 陕西 西安 710069) 摘 要: 为了提高拉曼被孢霉多不饱和脂肪酸的产量。通过转化的方法,将小克银汉霉的 DNA转入拉

2、曼被孢霉孢子细胞中。得到转化子 F2-70。随后对该转化子的油脂含量不饱和脂肪酸含量、葡萄糖 -6-磷酸脱氢酶活性进行了比较分析。实验表明:该转化子比出发菌株具有较显著改变,其干菌体含油率比原来提高了 30.6%,碘值提高了近 40%;该转化子经传代培养 10代以后,它的遗传性状仍然稳定。 关 键 词: 多不饱和脂肪酸;转化法;被孢霉;葡萄糖 -6-磷酸脱氢酶 中图分类号 : Q813 文献标识码 : A 文章编号: 1000-274X(2005)0148-6 近年来,围绕微生物生产多不饱和脂肪酸的遗传诱变育种,人们采用了大量物理的、化学的和基因工程的方法,并取得了较好的效果。随着生物技术的发

3、展,人们倾向于用基因工程来提高目的产量。如文献 1在番茄中表达了酵母9脂肪酸脱饱和基因,转基因果实中棕榈酸和亚油酸的含量上升;文献 2克隆了催化油酸转化成亚油酸的12脂肪酸去饱和基因,并在酵母中表达;文献 3在烟草中导入兰藻6脂肪酸脱饱和酶基因,结果,转基因烟草中 r-亚麻酸大为积累;文献 4从芜荽中分离克隆了4软脂酰 ACP脱饱和酶基因,并于烟草中转化,后者合成了占其总脂肪酸 5%的岩芹酸;文献 5从高山被孢霉中克隆了 AA和 EPA在生物合成中起关键作用的5-脂肪酸去饱和酶的基因;文献 6, 7分别将5-脂肪酸去饱和酶与延伸酶在酵母内共同表达,以 C18:3和 C18:4为底物获得了 AA

4、和 EPA,成功地实现了 PUFA生成合成途径的异源重组。文献 8从被孢霉细胞中克隆了-葡萄糖苷酶的 cDNA,并进行了其功能的表达。文献 9向大豆导入深黄被孢霉6-脂肪酸脱氢酶基因,也获得了一定效果。另外,文献 10将深黄被孢霉 M6-226-脂肪酸脱氢酶基因在酿酒酵母中的表达。由于产多不饱和脂肪酸的小克银汉霉具有生长速度快、菌丝粗壮、疏松、颜色较白,而被孢霉相对生长速度慢、菌丝较细密、颜色灰白,所以,将小克银汉霉的 DNA导入拉曼被孢霉细胞中,通过孢子细胞染色体 DNA和外源 DNA的一系列重组、交换和整合,可形成新的染色体组合 ,获得新的性状的菌株。本文报道了用转化的方法来进行被孢霉育种

5、的初步研究结果。 1 材料与方法 1.1 菌种、培养基、试剂 1.1.1 菌 种 拉曼被孢霉 (Mortierella ramanniana)M2-03、小克银汉霉 (Cunninghamella echinulate)C3-10,本实验室保存。 1.1.2 培养基 斜面培养基:采用 PDA培养基; 种子培养基:葡萄糖 50g/L,酵母膏 1g/L, MgSO4 - 2 -1g/L,(NH4)2SO4 3g/L,KH2PO4 2g/L,蛋白胨 0.5g/L, pH自然; 发酵培养基:葡萄糖 100g/L, 酵母膏 2g/L,蛋白0.5g/L, MgSO41g/L, (NH4)2SO44g/L,

6、 KH2PO4 3g/L,柠檬酸 1.2g/L, 柠檬酸钠 1g/L,微量元素液 1mL/L,pH自然; 基本培养基 (MM):葡萄糖 50g/L,(NH4)2SO43g/L,KH2PO41g/L,MgSO42H2O 0.5g/L,酵母膏 0.5g/L,蛋白胨 0.3g/L,微量元素液 1mL/L,pH自然。 1.1.3 试剂 2% CTAB, -巯基乙醇, 0.1mol/L MgCl2溶液, 0.1mol/L LiAc溶液,酚氯仿异戊醇液,异丙醇, 乙醇, TE缓冲液 ( pH8.0) , 5.0mol/L LiCl溶液, 聚乙二醇 (4000), 液氮, 苏丹黑, -萘胺, I2液 ,Na

7、2S2O3 5H2O。 1.2 方 法 1.2.1 DNA的提取 参考文献 11, 12 提取 DNA的方法并作改进:将小克银汉霉孢子培养 2d,真空抽虑菌丝,用无菌生理盐水、 20mmol/L EDTA、 无菌生理盐水分别洗一次,抽干,称重。加液氮,将菌体研磨至粉末。以每 1g菌体加 4mL CTAB抽提液(含 2% -巯基乙醇)于 65保温 45 60min,并不时上下混匀。再按 1g菌体加1.5mL 5mol/L的 LiCl充分混匀,水浴 30min。 4下离心 10min( 11 000r/min) 。加入等体积酚氯仿异戊醇液 , 轻轻上下混匀。离心 10min( 11 000r/mi

8、n) 。取上层水相至另一离心管中,加入 0.5 0.6倍体积冷冻的异丙醇,轻轻上下混匀, 4放置 20 30min,至出现絮状沉淀。离心 10min( 11 000r/min) ,倾去上清液,将离心管倒置于吸水纸上控干。用 70%乙醇洗涤沉淀 2 3次,真空干燥后,用适量的 TE液完全溶解沉淀。 -20保存备用。 1.2.2 DNA的转化 参考文献 13, 14的真菌转化法和文献8, 15作一改进:将培养 7 8d的被孢霉的新鲜分生孢子加入 MM悬液,调整在 100mL中约含有 108个分生孢子, 30摇床培养 4 6h,离心收集萌发的孢子,用30mL TE洗涤一次,再离心收集( 10 000

9、r/min)分生孢子,并悬浮于 0.4mL 0.1mol/L MgCl2中,浓度在 107个mL,30振荡保温 50min再离心并悬浮在 0.1mol/L LiAc中, 30振荡保温 30min;用 0.1mol/L LiAc将分生孢子调整在 1 610个 mL范围内按 0.5mL孢子悬液加入 5 10mL TE悬浮的 DNA 20 g的比例加入 DNA的 TE悬浮液,混匀后, 10过夜。再加入 6 8mL PEG充分混匀, 30保温 30 50min, 37热冲击 10min,静置 40min,离心收集分生孢子, MM液洗涤一次,最终用 MM液悬浮。均匀涂布于平板上 ,培养 2 3d,挑选转

10、化株。 1.2.3 检验 苏丹黑染色法:对文献 16的方法略作修改,即染色后离心,水洗一次,再离心,悬于等体积的无菌水中; 用 Soxhlet法抽提油脂及油脂的碘值测定17; G-6-PDH活性的测定18:氯化三苯基四氮唑还原法( TTC法) ,未加 TTC之前,调整 F2-70与出发菌株的吸光度,使它们的吸光度值相等,然后再同时加入TTC处理一定时间即可; 遗传稳定性实验:用斜面培养基将 F2-70进行传代培养,培养 10代后,测定第 1代和第 10代转化菌株 F2-70的菌体收率、 菌体含油率及葡萄糖 -6-磷酸脱氢酶活性, 将之进行比较, 其变化范围小于 5%,则说明它的遗传稳定性可靠。

11、 2 结果与讨论 2.1 形态比较(初筛) 通过形态对比 ,从培养了 2 3d的平板上挑选生长速度快,菌丝粗大,菌苔大、厚、密,颜色较浅的菌落于- 3 -00.10.20.30.4123456编号(次)吸光度(OD值)突变株出发株斜面,进行培养;通过复筛,从 203株转化子中得到了一株多不饱和脂肪酸量大幅提高的转化子 F2-70(见表 1) 。 表 1 出发菌株与转化菌株的形态比较 Tab.1 The comparision of figure of the original strain and F2-70Strains The original strain F2-70生长速度 慢( 2-

12、3d才能看到) 快(十几 h即可看到) 菌 丝 较小 较粗 菌 苔 薄、小、疏松 厚、大、密 颜 色 白而偏灰 偏白(后偏褐) 2.2 苏丹黑染色结果 2.2.1 转化菌株与出发菌株细胞脂肪粒的数目与大小的比较 将它们的斜面孢子用无菌水分别洗入液体培养基中,培养 6天,然后,通过离心、洗涤、染色、观察,最后,获得实验结果(表 2) 。可以看出,在相同培养条件和营养成分充足的条件下,虽然转化株的平均脂肪粒数目比出发菌株细胞脂肪粒的数目要小;但其脂肪颗粒要大得多,相对单位细胞的脂肪量也要大得多;这应与单位细胞中的脂肪酶的增加有关。 表 2 转化菌株与出发菌株细胞脂肪粒的数目与大小的比较 Tab.2

13、 The comparision of number and volumn of the original strain and F2-70Strains Number of fatty/cell Volumn of fatty/ m F2-70 4.6 2.47 The original strain 6.1 2.03 2.2.2 转化菌株与出发菌株脂肪酸量的比较 将它们的斜面孢子分别用无菌水洗入液体培养基中,培养 3d 以后,各取 5ml 悬液经相同浓度和体积的苏丹黑染色以后,在 580nm 下测定它们的吸光度值,并进行比较分析(图 1) 。从图 1 可以看出 ,菌体在相同条件下,培养 3

14、d,其油脂含量就有了较大的差别,说明它们的油脂积累量有了较大的不同。可能是因转录、翻译合成油脂的酶量或酶的活性发生了改变而导致的结果。 图 1 转化菌株与出发菌株油脂含量的比较 Fig.1 The comparision of fatty oil of the original strain and F2-70 2.3 转化菌株 F2-70与出发菌株的含油率及其碘值的比较 将转化菌株与出发菌株的斜面孢子用无菌水洗至液体培养基中,在 28下,摇床培养 6d。再抽滤、洗涤、干燥、研磨、抽提和测定,见表 3的数据比较分析,其中转化株 F2-70的干菌体平均含油量和碘值比对照株分别- 4 -00.05

15、0.10.15123456编号 (次 )吸光度(OD值)突变株出发菌株高出了 30.2%和 40.0%,可以看出,转化株 F2-70的合成不饱和脂肪酸的能力大大提高了 ,说明其对应的 DNA可能发生了变化,在转化过程中获得了目的基因。 表 3 转化菌株 F2-70与出发菌株的含油率及其碘值的比较 Tab.3 The comparision of lipid in biomass and I2scale of total fatty of the original strain and F2-70strains lipid in biomass /% I2 scale of total fatt

16、y 1 2 3 4 5 6 平均值 1 2 3 4 5 6 平均值 Original 25.5 25.0 24.3 23.7 24.4 24.6 24.6 86 81 83 82 84 82 83F2-70 30.6 33.7 32.8 31.9 31.5 32.3 32.13 118 120 115 117 118 113 116.82.4 葡萄糖 -6-磷酸脱氢酶 ( G-6-PDH) 活性的测定 图 2 出发菌株与突变株脱氢酶活性的比较 Fig.2 The comparision of Glucose-6-phosphate dehydrogenase of the original s

17、train and F2-70为了进一步获得证明,测量其酶的活性或酶量大小有无变化。将斜面孢子洗入液体培养基中, 28、摇床培养 3d、离心、称相同重量的菌丝和缓冲液研磨,然后,加入 TTC,与之反应 30-50min,取上清液测定它们的吸光度值。从图 2可以进一步说明,根据中心法则,如酶(蛋白质)的活性发生了变化,则说明 DNA也可能发生变化,由于转化菌株 F2-70比出发菌株的脱氢酶活性要大得多,说明转化株 F2-70获得了目的基因;为了进一步证实,再进行遗传稳定性实验 。 2.5 遗传稳定性实验 F2-70经传代 10代以后,测定其性能指标;实验结果(表 4)表明, F2-70菌株的性能

18、稳定,说明它是可遗传的、带目的基因的、有开发应用价值的、遗传稳定的转化株。 表 4 遗传稳定性实验 Tab.4 Genetic stability of F2-70Biomass /g-L) Lipid in biomass /% Active of G-6-PDH /吸光度值 The first generation 42.8 32.13 0.14 The tenth generation 42.2 31.8 约 0.14 The rate of change /% 1.4 1.03 0 - 5 -3 讨 论 孢子转化的方法是一种半定向的育种方法,具有较好的实用性,虽然,其诱变效率没有基因工

19、程重组技术高,但操作方法简便,实验条件要求较低。在此试验中,新鲜的分生孢子萌发时的同频率和萌发率是关键,其次是加入的 DNA的量及氯化镁与醋酸锂对孢子的影响效果。本文的实验结果初步显示,转化子获得了目的基因;孢子转化法是被孢霉育种中的一种较有效的方法。 参考文献 1 WANG C L,CHIN C T. Changes of fatty acids and fatty acid derived flavour compounds by expressing the yeast -9 desaturase gene in tomatoJ. J Agric FoodChem, 1996, 44(1

20、0): 3 399-3 402. 2 SAKURADANI E, KOBAYASHI M, ASHIKARI T, et al. Identification of 12-fatty acid desaturase from arachidonic acid-producing Mortierella fungus by heterologous expression in the yeast Saccharomyces cerevisiae and the fungus Aspergillur oryzae J. Eur J biochem, 1999, 216: 812-820. 3 RE

21、DDY A S, THOMAS T L. Expression of a cyanobactenal 6-desaturase gene result in -linolenic acid production intransgenic plantsJ. Nat Biotechnol, 1996, 14: 639-642. 4 CAHOON E B, SHANKLIN J, OHLROGGE J B. Expression of a coriander desaturase result in petroselinic acid production in transgenic tobacco

22、 J . Proc Natl.Acad Sci USA, 1992, 89: 11 184-11 188. 5 MICHAELSON L V, LAZARUS C M, GRIFFITHS G , et al. Isolation of a 5-fatty, acid desaturase gene from Mortierella alpinaJ. J Biol Chem, 1998, 273: 19 055-19 059. 6 JENNIFER M, PARKER-BAMES, DAS T, et al. Identification and characterization of an

23、enzyme involved in the elongation of n-6 and n-3 polyunsaturated fatty acidsJ. Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(15): 8 284-8 289. 7 BEAUDOIN F, MICHAELSON L V, HEY S J, et al. Heterologous reconstitution in yeast of the polyunsaturated fatty acid biosynthetic pathwayJ. Proc Natl Acad Sci USA, 2000,

24、97(12): 6 421-6 426. 8 TANAKA Y, AKI T, ISHIHARA K, et al. cDNA cloning and functional expression of a-glucosidase from Mortierella alliaceaJ. Applied Microbiology and Biotechnology, 2003, 62(8): 202-209. 9 卜云萍 , 李明春 , 胡国武 , 等 . 向大豆导入深黄被孢霉6-脂肪酸脱氢酶基因的初步研究 J. 大豆科学,2003, 22(1): 11-17. 10 刘莉,李明春,胡国武 , 等

25、 . 高山被孢霉 ATCC162666-脂肪酸脱氢酶基因在酿酒酵母中的表达 J. 生物工程学报 , 2001, 17(2): 161-164. 11 吴志红 , 汪天虹 , 黄 卫 , 等 . 简便易行的丝状真菌染色体 DNA提取法 J. 菌物系统 , 2001, 20(4): 575-577. 12 王关林 , 方宏筠 . CTAB法提取 DNA的方法 J. 植物基因工程 , 2002, (2): 742-747. 13 MORRIS A, DOUGLAS R, CATHRYN A D, et al. Zebrafish cDNA encoding Multifunctional fatty

26、 acid elongase involved in production of eicosapentaenoic (20:5n-3) and docosahexaenoic(22:6n-3) acidsJ. Marine Biotechnology, 2004, 6(3): 251-261. - 6 -14 贾盘兴 , 蔡金科 , 张树政 , 等 . 丝状真菌孢子转化法 .微生物遗传学实验技术 M. 北京 : 科学出版社, 2001. 15 TAKENO S, SAKURADANI E, MURATA S, et al. Establishment of an overall transfo

27、rmtion system for an oil-producing filamentous fungus Mortierella alpina Is-4J. Applied Microbiology and Biotechnology, 2004, 65(4): 419-425. 16 董欣荣 , 曹 健 , 赵 斌 , 等 . 几种真菌油脂的检测与提取 J. 郑州工程学院学报 , 2002, 23(1): 13-18. 17 李建武 , 肖能庚 , 余瑞元 , 等 . 生物化学实验原理和方法 M. 北京 : 北京大学出版社 , 1994. 139-141. 18 张志良 ,瞿伟菁 . 植物

28、生理学实验指导 M. 北京 : 高等教育出版社 , 1999. (编辑 曹大刚) Transformation method of obtaining poly- unsaturated fatty acid in a mortierella ramannianas high yield strain SUN Ji min, WANG Wei-wei, XIONG Ben-tao, HOU Xiao-juan ( Institute of Life Science, Northwest University, xian 710069, China) ABSTRACT: To increase

29、the productivity of poly-unsaturated fatty acid, the cunninghamella echinulates gene was transformed into Mortierella ramanniana strain . A high-yield strain-F2-70was obtained. Then its percent of poly-unsaturated fatty acidGlucose-6-phosphate dehydrogenase,biomass, lipids were analyzed and research

30、ed .The statistical results obtained show that the high-yield strain which we obtained is more mutants than the originations .The high-yield strain is as stable as the tenth generation and as the first one.And the productivity of F2-70 fatty acid is 30.2% higher than the original strains. Key words: poly-unsaturated fatty acid; transformation method; Mortierella ramanniana ;Glucose-6-phosphate dehydrogenase 作者简介 孙继民,男,湖南娄底人,生于1969年。讲师,西北大学生命科学学院硕士生,主要从事微生物生理生化及应用方面的研究。现主攻霉菌和放线菌的诱变育种及其代谢产物的发酵等方面的研究,曾发表相关论文两篇。 本文引用格式为: 孙继民,王卫卫,熊本涛,等.转化法获被孢霉不饱和酸高产菌株J. 西北大学学报(自然科学网络版) , 2005, 3( 5) : 0148.

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索
资源标签

当前位置:首页 > 企业管理 > 管理学资料

本站链接:文库   一言   我酷   合作


客服QQ:2549714901微博号:道客多多官方知乎号:道客多多

经营许可证编号: 粤ICP备2021046453号世界地图

道客多多©版权所有2020-2025营业执照举报