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北京地区鸭疫里莫氏杆菌的分离鉴定.doc

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资源描述

1、鸭疫里氏杆菌的分离鉴定及进化树分析吴翠娟 1,2,李福宝 1*李刚 2,3,张坤 2,吴玉寒 4,谢玉洁 4(1.安徽农业大学动物科技学院,安徽 合肥 230036 ;2.中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100093;3.动物营养学国家重点实验室,北京 100093;4.合肥中大生物技术发展有限公司,安徽 合肥 230088)摘要:从北京大兴区鸭场和安徽合肥肥西鸭场中分离感染菌株,通过对病鸭的临床症状和从病鸭及死鸭的剖检病变分析,疑似鸭疫里氏杆菌病例进行病料的细菌分离,并对分离的病菌进行形态培养、PCR检测、琼扩试验和外膜A蛋白的克隆,结果鉴定为鸭疫里氏杆菌,分别命名为BJY-2、BJ

2、YX-1和AH-1。并将测序结果与GenBank上公布的我国常见几种血清型相关序列进行比对,通过进化树分析结果发现BJY-2的外膜蛋白序列与FJ765034-RA2的最近;BJYX-1的外膜蛋白序列与FJ765033-RA1的相同;AH-1的外膜蛋白序列与5个血清型的较远。关键词:鸭疫里氏杆菌;分离;克隆;进化树分析鸭疫里氏杆菌病是由鸭疫里氏杆菌( Riemerella anatipestifer, RA)引起的鸭、鹅、火鸡等多种禽类的一种急性或慢性传染病 1,主要侵害27周龄雏鸭,是现代养鸭业中造成小鸭严重死亡的主要传染病之一。我国郭玉璞等 2于1982年在北京首次发现此病,此后在全国各地等

3、许多地区均有发生本病的报道。该病病原为鸭疫里氏杆菌,已报道有21种血清型3-4 , 各种血清型之间很少有交叉保护性 5。其中血清型1型、2型临床上最为常见, 且致病力最强。外膜A蛋白 (OmpA)具有很强的免疫原性,它可以激发机体的体液免疫反应还可以引起细胞免疫,而且具有交叉保护作用 6。吴芳等 7用抑制性差减杂交(SSH)试验发现,OmpA基因还与RA毒力有关。本研究对分离出的3株RA的OmpA基因进行克隆和序列分析,旨在从系统进化角度探讨分离株与其它血清型之间的毒力关系。并为其临床诊断和分子鉴定提供一定的理论依据。一 材料与方法(一)发病情况2008 年 10 月,北京大兴相继几个鸭场 2

4、 周龄雏鸭和成年鸭均有发病,且发病率高达10%。同期,安徽合肥肥西鸭场 6 周龄鸭发病,两个地区的病鸭发病状况相似,主要临床症状:精神萎靡,排黄白色或黄绿色稀便,咳嗽,从眼睛和鼻腔流出多量粘性或浆性分泌物,腹泻、头颈歪斜、不时甩头、有的脚肢麻痹、卧地不起,濒死期呈角弓反张。尸体剖检主要病理变化:鼻腔内积有粘液性分泌物;脑膜充血;心包内积有淡黄色纤维性渗出液,心包膜增厚;肝肿胀,表面覆盖一层淡灰色纤维素样膜;心包液混浊,心包表面有针尖大小的干酪样结节。 (二)病料来源及分离菌的鉴定1.病料来源病鸭来自北京大兴区和安徽合肥地区自然发病鸭场,无菌采取濒死期鸭的心血、脑、肝组织。2.培养性状观察各组织

5、分别接种于麦康凯培养基、鲜血琼脂平板和鸭疫里氏杆菌营养琼脂平板(简称RA 板) 。其中 RA 板置烛缸中培养,麦康凯和血平板常规培养均 37 24h48h,观察细菌的生长情况、菌落特征及溶血情况等。3.形态及染色特性将分离菌株接种于 RA 板, 37 烛缸法培养 24 h 后的培养物进行革兰氏和瑞氏染色, 光学显微镜下观察细菌的形态和染色特性。4. PCR 鉴定 对疑似鸭疫里氏杆菌病例进行 PCR 检测,采用引物 8P1、P2 可扩增 809bp 的 DNA 片段。引物序列为:P1:5ACTCAAGGAAGAGCGGATCA 3 ;P2:5GCTTCAGCAGAACCAACTCC 3 ,PCR

6、反应产物经琼脂糖凝胶电泳分析。(三)琼扩实验 按文献 9方法:取大量接种于 RA 板培养物,悬浮于 1ml 的 8.5% NaCl 中,在沸水中煮沸 5min,冷却后,4000r/min 离心 5min,上清液即为琼扩抗原。操作按常规方法进行,中间孔加抗原,外周孔加阳性、阴性血清。放入湿盒内 37 48h72h,观察反应结果。(四)基因克隆、测序及序列分析 阳性 PCR 产物采用 DNA 回收试剂盒回收目的片段,然后连接 pGM-T 载体,转化到TOP10 感受态细胞,经蓝白斑筛选阳性克隆,并送至上海生工生物工程公司测序。目的片段的回收、连接及转化均按文献 10 报道的方法进行。采用 DNA

7、Star 软件对 3 菌株的OmpA 基因序列与国内常见血清型菌株的相应序列进行分析比较,绘出系统进化树。2 结果(一)细菌的分离及培养特性病料接种RA板,经37烛缸法培养24h48h后,为光滑、微突起、透明、奶油状、直径为lmm2.0 mm菌落。鲜血琼脂上长出乳白色、半透明、微凸起的圆形菌落。接种在麦康凯琼脂平板上均不生长。(二) 形态及染色特性细菌纯固体培养物经革兰氏染色结果为阴性、无芽孢的小杆菌,见稍长的丝状菌状;瑞氏染色呈两极浓染。(三) PCR 鉴定结果 不同鸭场分离株进行 PCR 扩增,产物经 1.0%琼脂糖凝胶电泳分析均出现 809 bp 大小的目的片段 见图 1 。 (四)琼扩

8、试验结果在阳性血清和抗原孔之间产生明显的特异性沉淀线,阴性血清与抗原无沉淀线。(五) 菌株 DNA 序列分析利用 DNA Star 对 3 株的 OmpA 核苷酸序列进行分析显示:BJYX-1 与 RA1 型和 RA2 型株图 1 3 分离株 RA 的 PCR 扩增结果注:1. DL5000Marker;2.BJY-2;3.BJYX-1;4.AH-1;5.Control的同源性为 100%,与 RA3 型、RA4 型和 RA5 型株同源性均为 99.9%,只有 1 个核苷酸差异;BJY-2 与 RA1 型和 RA2 型株的同源性最高为 99.8%,只有 2 个核苷酸差异,与 RA3 型、RA4

9、型和 RA5 型株同源性均为 99.6%;AH-1 与 RA1 型和 RA2 型株的同源性最高为 99.3%,与 RA3型、RA4 型和 RA5 型株同源性均为 99.1%。但 BJYX-1 和 BJY-2 分离株与 AH-1 分离株的同源性分别为 99.3%和 99.0%,差异较大。比对证实该目的片段为 RA 的 OmpA 基因序列 见表 1。(六)系统进化树分析BJYX-1 株、BJY-2 株和 AH-1 株和中国常见的 5 种血清型的进化树分析表明:BJY-2 与FJ765034-RA2 的 OmpA 序列最近,说明 BJY-2 分离株与 RA2 型毒力和血清型靠近;BJYX-1与 FJ

10、765033-RA1 的 OmpA 序列相同,说明 BJYX-1 分离株与 RA1 型毒力和血清型靠近;AH-1 与 5 个血清型代表序列较远 见图 2。表 1 3 株 RA 分离株 OmpA 基因与标准株 RA1、RA2、RA3、RA4 和 RA5 型同源性比较(%)注:1. BJYX-1; 2.BJY-2; 3.AH-1; 4.FJ765033-RA1; 5.FJ765034-RA2;809bpbp5000300020001000750500250100图 2 3 株 RA 分离株 OmpA 基因与标准株 RA1、RA2、RA3、RA4 和 RA5 型系统进化树3 讨论与小结本实验对分离菌

11、的培养特性和形态观察、PCR 试验、琼扩试验,以及 OmpA 基因测序,确定 2008 年 10 月北京大兴区和安徽合肥肥西鸭场中流行的传染性疫病,均是由 RA 引起的鸭疫里氏杆菌病。通过测序结果和 GenBank 上公布的我国常见 5 种血清型的 OmpA 比对分析,BJYX-1 与 RA1 型和 RA2 型株的同源性均为 100%,但进化树显示与 RA2 近; BJY-2 与 RA1型和 RA2 型株的同源性均为 99.8%,与 RA1 近;AH-1 与 RA1 型和 RA2 型株的同源性均为99.3%。但北京大兴的 BJYX-1 和 BJY-2 分离株与安徽合肥肥西 AH-1 分离株的同

12、源性差异很大,也许是属于这 5 型之外的其他血清型;这和 RA 复杂的血清型的相关报道是一致的。外膜蛋白是革兰氏阴性菌外膜的主要结构成分,具有免疫原性且能诱导保护性免疫反应 11。吴芳等 7通过抑制性差减杂交试验发现外膜蛋白为 RA 可能的毒力基因,但没有发现明确区分 RA 毒力和非毒力菌株的标志基因。近年来,用于预防鸭疫里氏杆菌感染的疫苗,虽有灭活苗、弱毒苗、亚单位疫苗等, 但由于 RA 的多血清型,且菌苗所诱导的免疫力具有血清型特异性,所以效果不佳。因此理想的菌苗应含有主要血清型菌株,以提供有效的保护。周祖涛等 11通过对 OmpA 的研究来说明 OmpA 是 RA 最主要的外膜蛋白,而且

13、各血清型的 OmpA 蛋白同源性较高,因此可以用 OmpA 基因的表达产物建立 ELISA 方法检测 RA 所有的血清型。当前鸭疫里氏杆菌感染呈全球性流行, 是造成养鸭业经济损失的最主要传染病之一, 其血清型之多、地域分布之广、加之用药治疗易产生耐药性, 使得对该病的防制工作相当繁重 12。因此建议预防此病(1)加强饲养管理和场区环境卫生,定期进行场地消毒,杜绝或减少各种应急因素的产生。 (2)对于鸭疫里氏杆菌发病严重地区,建议在饲料中定期按疗程添加一些敏感药物进行预防,但注意不能滥用,以防鸭产品的药物残留,而影响其产品对人的安全性。参考文献:1 BW 卡尔尼克主编高福,刘文军主译. 禽病学(

14、第十版) M. 北京:北京农业大学出版社, 1999.2 郭玉璞,陈德威,范国雄,等 北京鸭鸭传染性浆膜炎的调查研究J.牧兽医学报, 1982, 13 (2) : 1013 Huang B S, Kuang J. Development of an EL ISA using a recombinant 41 kDa patial protein for the detection of R iem erella anatipestifer in-fection in ducks J . VeterinaryMicrobiology, 2002, 88: 339-349.4 Subramania

15、m S, Bin H, Loh H. Characterization of a p redominant immunogenic outer membrane protein of R iem erella anatipestifer J .Clinic and Diagnostic Laboratory Immunology, 2000, 7 ( 2 ) :168-174.5 Kraiczy P, SkerkaM, Zipfel P F, et al. Mechanism of complement fesistance of pathogenic R iem erella anatipe

16、stifer isolates J . Immunophamacol, 2001, 67: 3993-4001.6 霍翠梅.鸭疫里默式杆菌检测方法的建立.硕士论文.山东农业大学.2007,6.7 吴芳,蔡建平,陆承平,等.用抑制性差减杂交筛选鸭疫里氏杆菌 2 型可能毒力基因J.南京农业大学学报,2008,31(4):102-106.8 胡清海,刘晓文,赵世华,等. 应用PCR技术检测鸭疫里默氏杆菌的研究J.中国预防兽医学报, 2002,24 (6):273-275.9 马兴树.禽传染病实验诊断技术M.北京:化学工业出版社, 2006: 299-3021.10 Sambrook J, Russe

17、ll D W. Molecular Cloning: A Laboratory Mannal M . 3 rd ed. 北京: 科学出版社, 2002: 436-439. 11 周祖涛,陈芬芬,李自力,等.鸭疫里默式杆菌 OmpA 基因的克隆与表达J.中国兽医学报,2008,28(1):20- 23.12 吴芳,周红,蔡建平,等. 1 株无致病力的鸭疫里氏杆菌的分离及鉴定J.畜牧与兽医,2007 (09):13-15. 作者简介:姓名:吴翠娟 性别:女出生年月:1984年10月30日学校:安徽农业大学学位:硕士生研究方向:从事兽医生物技术与临床应用方面研究通讯地址:北京市海淀区圆明园西路2号中国农业科学院北京畜牧兽医研究所兽医楼邮编:100193电话:010-62813876Email:

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