1、分子克隆第三版有详细介绍，结合其中的示意图很容易理解GST 融合蛋白沉降技术利用了 GST 对谷胧甘肤偶联球珠的亲和性，从非相互作用蛋白的溶液中纯化相互作用蛋白。 GST 融合的探针蛋白从细菌中表达和纯化，并平行制备细胞裂解液(可被35S 标记或非标记)，再将 GST 融合蛋白探针和细胞裂解液在谷胧甘肤琼脂糖球珠存在下混合并孵育，以使蛋白结合。GST 融合探针蛋白和任何结合分子被离心收集，获得的混合物经洗涤后，用过量游离的谷胧甘肤洗脱或直接在 SDS-PAGE 上样缓冲液中煮沸。蛋白质经 SDS-PAGE分离后进行下一步的 western 印迹、放射自显影及蛋白质染色分析。GST 沉降技术对探
2、测蛋白在溶液中的相互作用特别有用，而这种相互作用在膜的分析中可能是检测不到的。GST 沉降实验通常有两种应用:确定融合(或探针) 蛋白与未知 (或靶)蛋白间新的相互作用(Kaelin et al. 1991, Grlinick and Chao 1996),以及证实探针蛋白与已知蛋白质间可疑的相互作用(例子请见 Posern et al. 199$, Grgureaich et al. 1999, Hunteret al. 1999, Sun et al. 1999)。这两种实验的设计和实施都有所不同。 GST pull down 是一种在体外研究蛋白质相互作用的方法，基本原理是这样的：假定
3、A 蛋白和B 蛋白可能有相互作用，我们就将其中一个蛋白比如 A 蛋白融合 GST 标签，然后将 GST-A 和B 以及能特异结合 GST 的 Sephrose 4B beads 孵育一定时间，然后充分洗涤未结合的蛋白，煮沸 beads 进行 SDS-PAGE 电泳，然后进行放射自显影（如果两个蛋白通过体外翻译并且 S35 标记的话） ，就可以看见 GST-A 和 B 分别对应的条带， 表明 GST-A 和 B 因相互作用而被 GST-A pull down，如果没有相互作用，就只有 GST-A 相对应的一条带。我们实验室就是这么做的，当然也有细菌表达 GST-A 蛋白，而 B 蛋白通过细胞裂解
4、液中得到，电泳后直接 western blot 检测。1、首先你的目的是“要检测这两种蛋白是否与寄主细胞之间存在相互作用”，也即是说要寻找这两种蛋白的相互作用蛋白-在寄主细胞表面，也就是说你要寻找的相互作用蛋白是膜蛋白，对吗？pulldown 似乎不是达到你目的的最佳办法，因为你首先要提膜蛋白。而膜蛋白一般都疏水，量少，好像难以 pulldown-缓冲液系统不适合。我想，你真正的目的是检测寄主细胞表面是否有你这两个蛋白的受体或配体，细胞 ELISA 应该可以胜任这个目的。其他方法你可以在查查看？2、如何保证你融合蛋白（细胞提取物）的尽可能大的活性，只有一条：快速、低温纯化。即，要保证你纯化过程尽量低温，时间尽量短，得到蛋白后立刻冻纯-70。当然，你还是有必要做下你蛋白活性到底丧失有多快。3、如果你还是执意要做 pulldown，最好还是直接买珠子，试剂盒太贵了，不划算。
