1、标本采集手册检验标本的正确采集是获得准确、可靠检验结果的关键。在自动化检验仪器应用普遍的现代临床实验室中，基础的检验标本的采集和处理是检验前质量保证的主要环节。检验前的质量保证包括检验申请、患者准备、样品采集、运送到实验室并在实验室内的传递等工作。一 检验申请单（1） 医师开申请单时应对患者讲清楚采集标本的目的、采集的时间、方法及注意事项，同时应向患者讲明采集标本前的准备和用药须知，及可能会影响到检验结果的注意事项。（2） 临床医师在填写申请单时，应完整填写申请单的各项内容，字迹清晰，内容应包括：患者的姓名、性别、年龄、病例号（或住院号） 、科室、床号（住院病人）申请日期、标本类型、临床诊断、
2、申请检验项目及特殊说明（如用了可能影响检验结果的药物） 、申请医师姓名、标本采集日期和时间。（3） 临床医师在填写申请单时，不同标本类型的检验项目不应填写在同一张申请单上，应分别填写，例如血常规和尿常规应填写两张常规申请单，分开填写；填写申请单时要根据检验目的填写相应的申请单，例如检查肝功能、肾功能等生化项目填写生化检验申请单，检查乙肝两对半等免疫学项目时应填写免疫检验申请单。（4） 门诊病人检验申请单必须有临床医生签字及盖章，免疫、生化、常规等检验项目应分开开据，不同标本类型检验项目也应分开开据。二 患者准备（1） 患者状态一般需要在安静、休息状态下采集标本。如患者处于高度紧张状态，可使血红
3、蛋白、白细胞等增高，皮质醇、肾素、醛固酮和生长激素等的血浆水平也会升高；运动后由于能量的消耗、体液丢失，可造成 CK、LDH、ALT、AST 等一过性升高，还可引起血液中钠、钙、白蛋白、血糖等成分的改变。（2） 饮食多数试验要求在采血前禁食 12h，因为饮食中的不同成分可直接影响检验结果。 普通进餐后血液中的 ALT、GLU、BUN、Na 等均可升高；高蛋白膳食可使血液尿素、尿酸及血氨增高；高脂肪饮食可使甘油三脂大幅度增高；食物中如果含有动物血液，可引起粪便潜血试验假阳性。 长期饥饿可使血浆中蛋白质、胆固醇、甘油三脂、尿素、葡萄糖等水平降低，相反血肌酐及尿酸则增高，由于饥饿时机体的能量消耗减少
4、，故血液中T3、T4 水平将明显减低。 饮酒后可使血浆乳酸、尿酸盐、AST 等增加，长期饮酒者可导致ALT、AST、GGT 、高密度脂蛋白胆固醇增高。 长期吸烟者白细胞计数增加、血红蛋白偏高、嗜酸性粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、平均红细胞体积偏高。此外儿茶酚胺亦较不吸烟者为高。（3） 药物药物对检验结果的影响非常复杂，其干扰检验结果主要有 4 条途径影响待测成分的物理性质参与检验过程的化学反应影响机体组织器官生理功能和（或）细胞活动中的物质代谢对机体器官的药理活性和毒性作用。在采集样本前以暂停各种药物为宜，如果某种药物不可停用，则应了解该药物可能对检验结果产生的影响。（4） 时间 病人
5、准备还应考虑病人的生物钟规律，特别是激素水平分析，如女性生殖激素与月经周期密切相关；胆固醇则在经前期最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经前期开始增高，血浆蛋白质则在排卵时减低。（5） 体位 体位影响血液循环，由于血液和组织液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆总蛋白、白蛋白、胆红素及甘油三酯等浓度增高；红细胞计数、血红蛋白等亦可增加。故采集标本时要注意保持体位的一致性。三、标本采集1. 血液检验标本采集方法血液检验标本分为全血、血清、血浆等。全血标本主要用于临床血液学检查，例如血细胞计数和分类（即血常规） 、外周血细胞形态及性质分析、血细胞沉降率等；
6、血浆标本适合凝血功能检验；血清标本多适用于临床化学和免疫学的检测。（1） 采血时的注意事项严格按照无菌技术操作，无论医生、护士、检验人员除穿戴工作服外，还应戴一次性口罩，同时严格做好采血手的消毒，防止患者采血部位感染。保证一人一针一巾，每采集一名患者血液后均应用速干手消毒液进行消毒后再为下一位患者采血，杜绝交叉污染。对所有采血器材严格执行使用前再次检查，保证安全。静脉采血时止血带离抽血扎针部位上方约 5cm 距离，注意袖口不要太紧，止血带压迫时间宜小于 1 分钟，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果，如乳酸增高、PH 值降低、K 离子、 CA 离子、肌酸激酶升高等。 大多数化
7、验检查要求清晨、空腹、采集静脉血尽可能避免在输液同侧取血，输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。 避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净。避免特别用力抽吸和推注、避免化学污染和细菌污染引起的溶血。因为红细胞的某些成分与血清（浆）不同，样本溶血可导致红细胞某些成分释放，影响实验室检查结果，如使 K 离子、转氨酶明显升高。 标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。当取血不顺利时，切忌在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。 采集样本所用材料的安全处置：使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内进行安全处置，禁
8、止对使用过的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物；注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类存放收集。 真空采血过程如有血液外溢和污染，立即使用过氧乙酸或 75%的酒精溶液消毒处理。（2） 采集过程收取检验申请单（护士、检验人员）审查合格（核对检验申请单上姓名、住院号、科别、床号、检验项目、临床诊断、申请医师等信息是否填写清晰， 能正确辨认）检查真空采血管条码信息是否与申请单病人信息和要求检验的信息一致按申请单上的病人姓名呼唤其姓名以再次确认病人找好采血静脉并消毒按照采血顺序采取静脉血用无菌棉签压迫采血点止血并嘱咐患者按压采血点 5-10
9、分钟充分混匀样品（若无条码应在样品管上填写病人姓名、性别、年龄等信息）送至相关部门检测（由运送部或专门医护人员完成）（3） 真空采血法采集部位通常选择手肘中央部位较粗的静脉血管，用食指触摸是否为有弹性的血管（肌肉较无弹性） ，若血管不明显，请轻拍手肘中央部位（约 5-10 次） ，让血管较易浮现，若该部位不明显，可改用手背处静脉采血。小儿可采用股静脉或颈外静脉采血，但有危险性，以少用为宜。真空采血方法1）.固定穿刺部位后，先以碘酒消毒，以选定之静脉穿刺部位为中心点，由内向外以环状涂拭消毒，消毒直径约为 7.5cm。2）.在穿刺点上端扎压脉带（约 5cm） ，松紧适宜，并嘱其握紧拳头，使静脉充盈
10、暴露。3）.拔出采血穿刺针的护套，左手拇指绷紧皮肤并固定静脉穿刺部位。右手拇指与示指持针沿静脉走向，使针头与皮肤成 30角迅速刺入皮肤，在向前（针头与皮肤成 5角）刺入静脉壁进入静脉腔。4）.见有回血后，再将针头沿血管方向前进少许，以免针头滑出，但不可用力深刺，防止穿透血管壁而造成血肿，将胶塞穿刺针直接刺入负压采血管的胶塞头盖的中央，血液被自动吸入采血管内，同时解开压脉带。5） .如需多管血样，将刺塞针拔出后再刺入另一采血管。6）.采血完毕，嘱患者松开握紧的拳头，并用消毒干棉签按压穿刺点，拔出穿刺针，并嘱咐患者按压采血点 5-10 分钟，直到无血渗为止。7).加有抗凝剂 的采血管抽血后需要立即
11、轻轻颠倒混匀 8 次 ，含有分离胶或促凝剂的采血管需要颠倒混匀至少 5-8 次。8）采集后在采血管上贴上条码，若无条码标明患者的姓名、性别、年龄等信息。一次采血、多管血液分配顺序：1）.黄色（血液培养瓶，微生物学标本）2).红头管（无添加剂的采血管，生化、免疫学标本）3).浅蓝头管（109mmol/L 枸橼酸钠抗凝管，抗凝剂与血液的比例是 1：9，凝血试验标本）4).黑头管（ 109mmol/L 枸橼酸钠抗凝管，抗凝剂与血液的比例是 1：4，血沉试验标本）5).绿头管（肝素抗凝管，微量元素试验标本）6).紫头管（ ETDA 抗凝管，血常规、血细胞形态与性质分析、糖化血红蛋白试验标本）7）.灰头
12、管（添加葡萄糖分解抑制剂管）8）.金黄色头管（含分离胶促凝管，生化、免疫学标本）采血量：采血量视检查项目的不同而有不同的要求，具体要求如下：1).常规、糖化血红蛋白定量测定、血细胞形态与性质分析：按紫头抗凝管刻度采血至 2.0ml；2).血细胞沉降率：按黑色头抗凝管刻度采血至 2.0ml；3).凝血功能检测：按浅蓝色抗凝管刻度采血至 2.0ml；4).微量元素检测：按白色头抗凝管刻度采血至 2.0ml5).临床生化和免疫学检验项目：按红头采血管刻度采血至 4.0-5.0ml；6).血培养瓶：每瓶需要 8.0-10.0ml 血液，儿童瓶为每瓶需血液 1.0-3.0ml（注意：添加抗凝剂的采血管采
13、血时采血量不可过多或过少，采血过多抗凝剂的浓度不够，易导致血液凝固，采血过少抗凝剂浓度太高会影响检验结果） 。（4） 末梢采血法主要用于需要微量血液的检验项目和婴幼儿血常规检验。由于末梢血与静脉血的成分有差异，因此，有条件时应尽可能采集静脉血。 采血方法：1） 轻轻按摩采血部位（左手无名指指腹内侧） ，使局部组织自然充血。2） 消毒皮肤，待其干燥后，紧捏采血部位两侧。3） 右手持一次性消毒采血针迅速刺入（深度以 2-3mm 为宜） ，血液自行流出或稍加挤压后流出。第一滴血液混入组织液，一般将其弃去不用，或根据检验项目内容要求决定是否使用。4） 采血结束后，用无菌干棉签压住采血部位以止血。5）
14、采集后在采血管上贴上条码，若无条码标明患者的姓名、性别、年龄等信息。 注意事项：1） 采血时必须注意严格消毒和生物安全防范，采血针为一次性使用。2） 凡局部有水肿、炎症、发绀或冻疮等病变的均不可作为穿刺部位。3） 取血时可稍加挤压，但切记用力过大，以免使过多组织液混入血液中。4） 采血要迅速，防止流出的血液发生凝固。5） 采用手工法进行多项常规检验时，血液标本采集顺序为血小板计数、红细胞计数、血红蛋白测定、白细胞计数及白细胞分类计数。2. 尿液标本采集（1） 告知患者：医师在填写尿液检查的检验申请单后，首先应告知患者关于尿液标本采集的目的，以书面的形式具体指导患者采集尿液标本。（2） 尿液采集
15、的一般要求： 患者要求：患者处于安静状态，按常规生活、饮食。 生理状态：运动、性生活、月经、过度空腹或饮食、饮酒、吸烟及姿势和体位等影响某些检查结果。 避免污染：患者先洗手并清洁外生殖器、尿道口及周围皮肤。女性患者特别要注意避免阴道分泌物或月经血污染尿液，男性患者要避免精液混入。要避免化学物质（如表面活性剂、消毒剂） 、粪便等其他污染物混入。 采集时机：用于细菌培养的尿液标本，必须在使用抗生素治疗前使用无菌容器采集，以便利于细菌生长。 特殊要求：采用导尿标本或耻骨上穿刺尿标本时，医护人员应先告知患者及家属有关注意事项，然后由医护人员进行采集。采集婴幼儿尿标本时，由儿科医护人员指导，并使用小儿专
16、用尿袋采集标本。（3） 明确标记：在尿液采集容器和检验申请单上，明确标记患者姓名、门诊号或住院号、性别、年龄、检验项目、采集尿液标本的日期和时间、标本量和类型等信息，或以条形码作为唯一标识。（4） 尿液标本采集容器要求: 使用清洁、干燥、有盖、便于标记和转送、一次性，有较大开口便于收集的容器。 无干扰化学物质混入，不可使用未经洗涤的装药瓶或试剂的器皿收集标本。 能够收集足够尿液，容积 50-100ml，如收集定时尿，容器应足够大并加盖，必要时添加防腐剂。 如需培养应在无菌条件下，用无菌容器收集中段尿液。（5） 临床医师可根据检查目的和检验要求选择不同的尿液标本类型及采集方式，常可采用下列标本：
17、 晨尿：晨尿是指清晨起床后、未进早餐和做运动之前第一次排出的尿液。晨尿一般在膀胱中的存留时间达 6-8 小时，其各种成分浓缩，已达到检验或培养所需要的浓度。可用于肾脏浓缩功能的评价，人绒毛膜促性腺激素（hCG）的测定，尿糖，尿蛋白等测定以及血细胞、上皮细胞及管型等有形成分检查。住院病人最适宜采集晨尿标本。 随机尿：指患者无须任何准备、不受时间限制、随时排出的尿液标本。但随机尿易受饮食、运动、药物的影响，可能导致低浓度或病理性临界值浓度的物质和有形成分的漏检，因此随机尿不能准确反应患者的情况。但是随机尿标本新鲜、易得，最适合于门诊、急诊患者的尿液筛检。 餐后尿：餐后尿是指午餐后 2-4 小时内的
18、尿液。餐后尿有利于病理性尿胆原（最大分泌时间） 、尿糖和尿蛋白的检出。 3 小时尿：上午 6-9 时的尿液称为 3 小时尿，多用于检查尿液有形成分，如 1 小时尿排泄率检查等。 12 小时尿：即从晚上 8 时开始到次晨 8 时终止的 12 小时内全部的尿液。女性采集标本前要清洗外阴，夏天则要添加 40%的甲醛 1ml 防腐。检验当天，除正常的饮食外不再饮水，以利于尿液浓缩。12 小时尿有利于尿液有形成分计数（如 Addis 计数） 、微量白蛋白和球蛋白排泄率测定。 24 小时尿：用于尿液成分定量检查分析如尿总蛋白、尿素、内生肌酐清除率、儿茶酚胺、17-羟皮质醇、电解质等及结核杆菌检查等。规范采
19、集 24 小时尿液标本最为困难，最常见的问题是未能采集到全部 24小时内的尿量。因此，采集 24 小时尿必须要求患者密切配合。采集方法：尿液采集当天早晨 8 时患者排空膀胱并弃去尿液，从此时开始计时，之后每次排尿均应收集于一大容器内，至次日早晨 8 时最后一次尿液共 24 小时内的所有尿液全部收集于洁净容器内。在收集期内每次尿液标本均应放冰箱（2-8）或预先添加合适的防腐剂。全部收集完毕测量并记录24 小时尿液总量，将全部尿液送检，检测前必须从分混匀尿液，再从中取出约 40ml 用于检验，其余尿液可弃去。 中段尿：一般适用于细菌培养。采集标本前先清洗外阴，女性清洗尿道旁的阴道口，男性清洗龟头；
20、再用 0.1%的清洁液（新洁尔灭等）消毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂清洗尿道口，以免影响细菌的生存力。在排尿过程中，弃去前、后时段排出的尿液，以无菌容器采集中间时段的尿液，其目的是避免生殖道和尿道远端细菌的污染。 导管尿和耻骨上穿刺尿：以无菌术采集导管尿、耻骨上穿刺尿，主要用于尿潴留或排尿困难的患者尿液标本的采集（2 岁以下小儿慎用） ，但在采集前必须征得患者或家属同意。适用于尿液的细菌培养。 特殊体位尿液标本：如分别采集直立或运动后尿液标本与平卧 8 小时后尿标本，对体位性蛋白尿，运动性血尿诊断有帮助。（6） 尿液标本采集的注意事项： 应用清洁、有盖、干燥的一次性容器采集。 采集的尿液量：尿
21、常规与一般定性检查留取尿液约 30-100ml（计时尿如24 小时尿液标本采集应留取 24 小时尿液总量） 。 尿液检验最好留取新鲜标本及时检查，放置时间过长尿液生长细菌，使其中的化学成分发生变化，如葡萄糖被分解；另外尿液中有些化学物质和有形成分不稳定，一经排出后易发生物理、化学变化。因此尿液标本应该在采集后加盖立即送检，2 个小时内检查完毕。 尿胆原等化学物质因光照分解或氧化，故需要避光。 防止污染:尿液标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便及其它异物混入。 尿液标本如不能及时送检或收集较长时段尿样，必须进行适当处理或保存，以降低因标本送检延迟而引起的理化性质改变。 采集后在尿液容器上
22、贴上条码，若无条码标明患者的姓名、性别、年龄等信息。（7） 尿液标本的保存 冷藏冷藏是保存尿液标本最简便的方法，一般可保存 6 小时，但要避光加盖。冷藏保存在 24 小时内可抑制细菌生长，但有尿酸和磷酸盐沉淀可影响显微镜检查结果。因此，不推荐在 2 小时内可完成检测的尿液标本进行冷藏保存。冷藏保存主要用于电解质、肌酐、葡萄糖、总蛋白、白蛋白、重金属、药物、雌三醇等检查。 防腐尿液常规筛检尽量不使用防腐剂，然而对计时尿和在标本采集后 2 小时内无法进行尿液检测，或被检测的成分不稳定时，可根据检验目的选择不同的防腐剂，同时，尿液仍需冷藏保存。临床最多用的尿液防腐剂有：1）甲醛：用于尿液有形成分的检
23、查，对尿液中细胞、管型等有形成分有固定作用。100ml 尿液中加入 40%甲醛 0.5ml。因甲醛具有还原性，故不适合于检查葡萄糖的尿液标本的防腐。2）甲苯：常用于尿糖、尿蛋白等化学成分的定性或定量检查。100ml 尿液中加入甲苯 0.5ml。3）浓盐酸：常用于定量测定尿醛固酮、儿茶酚胺、17-羟皮质类固醇、17-酮类固醇等尿液标本防腐，每升尿液中加入 10ml 浓盐酸。使用时一定要注意在采集第一次尿液标本之后再加浓盐酸。3.粪便标本采集及注意事项粪便标本的采集及运送正确与否，直接影响检验结果的准确性。（1） 患者准备 检查前医师应告知患者停用影响检验结果的药物和食物。如做大便潜血试验时，应嘱
24、患者于检查前 3 天内禁止肉类、含动物血的食物、某些蔬菜，禁服铁剂和维生素 C 等对实验有干扰作用的药物。（2） 容器要求 采集常规检查的粪便标本，应使用一次性、无渗漏、有盖、无污染、便于标识的干净容器，且大小适宜。用于细菌培养的容器应无菌，且标识明显。（3） 明确标记 在粪便采集容器和检验申请单上，明确标记患者姓名、门诊号或住院号、性别、年龄、检验项目、采集标本的日期和时间、标本量和类型等信息，或以条形码作为唯一标识。（4） 采集方法及注意事项因检查目的的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的粪便 3-5g，必要时可肛拭子采取，放入容器内，贴好标识送检。应选择异常成分的粪便，如粘液或脓血
25、等部分；外观颜色无异常的粪便必须从其表面、深处及末端等多处采集。 不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮的一端挑取标本。 检查蛲虫卵需用透明薄膜于半夜 12 时，于肛门周围皱襞处拭取标本并立即送检。 检查血吸虫卵时应留取粘液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g 的粪便，并尽快送检。 检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新鲜排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接收标本后应立即进行检查。 粪便标本采集后应
26、及时送检，一般常规检查应在在标本采集后 1 小时内检查完毕，寄生虫和虫卵检查不宜超过 24 小时，否则可因 PH 及消化酶等的影响，而使粪便中的细胞成分破坏分解。4.阴道分泌物标本采集（1）患者准备标本采集前停用干扰检查的药物。月经期间不宜进行阴道分泌物检查。检查前 24 小时禁止盆浴、性交、局部用药及阴道灌洗等。（2）容器要求 标本采集容器和器材要清洁干燥，不含任何化学物质和润滑剂，且便于标识，用于细菌检查的标本容器应无菌。（3）明确标记 在白带采集容器和检验申请单上，明确标记患者姓名、门诊号或住院号、性别、年龄、检验项目、采集标本的日期和时间和类型等信息，或以条形码作为唯一标识。（4）标本
27、采集方法及注意事项阴道分泌物由妇产科医师采集1. 采样前禁欲时间为 27 天。如需多次采集标本，每次经与时间均应尽可能一致。3各月内至少检查 2 次，2 次间隔时间应7 天，但不超过 3 周。2. 应提供患者关于精液标本采集的清晰的书面和口头的指导，应强调精液标本采集必须完整，应要求患者告知精液标本是否有部分丢失的情况。3. 使用专用或指定 清洁干燥广口带刻度容器收集精液。尽在特殊情况下，可使用专门为采集精液设计的无毒性避孕套来采集标本。4. 容器应保持在 2037oC 环境中，并尽快送检。容器必须注明患者姓名和（或）识别号（标本号或条码） ，标本采集日期和时间。5. 应将一次射精精液全部送检。如标本不完整，应在检验报告中注明。
