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胚胎植入前遗传学诊断的失误及改进.docx

上传人:dzzj200808 文档编号:2828058 上传时间:2018-09-28 格式:DOCX 页数:5 大小:20.59KB
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资源描述

1、胚胎植入前遗传学诊断的失误及改进 朱前勇 综述 颜建华 审校 20 世纪 90 年代初以来,随着分子生物学技术的日益完善,胚胎植入前遗传学诊断(preim plantation genetic diagnosis, PGD)的发展十分迅速,临床上可以鉴定性别,诊断多种单 基因病及染色体病,全世界已有近百例婴儿经 PGD 后诞生。但临床上 PGD 仍存在 20%左右的误 诊率1,主要在于微活检技术的有效性不足和 PGD 常用的两种分析方法,即聚合酶 链反应(PCR)和荧光原位杂交(FISH)在利用单细胞做底物时存在着缺陷。许多学者针对这些 原因开展了一些新的方法,本文就 PGD 的误诊原因及改进

2、作一综述。 1 显微活检技术的有效性 PGD 无论从卵细胞的极体还是从卵裂球中取材,都需要运用微活检技术,这是 PGD 技术的一 个难点。Reubinoff2报道:28%的卵细胞由于活检操作失误而不能用于 PGD,原因 在于分离紧密连接的卵裂球能损伤细胞膜。Shee3把常规活检时分别用来固定囊 胚、酸溶透明带、抽吸卵裂球的 3 个吸管,减少为用 2 个,1 个仍固定囊胚,另 1 个先用酸溶蚀 透明带,然后把酸吸回再抽出卵裂球。这大大缩短了活检时间,且在透明带上溶开的孔径与 吸管直径相同但略小于卵裂球的直径,从而避免活检后细胞质流出和细胞膜破裂。该法使活 检的有效性提高了 10%3 。另外, C

3、ieslak 报道新开展的三维透明带部 分切开术用于卵裂球活检,是在透明带上做一个 V 形切开( 交叉裂口),造成一个三角边口, 足够微吸管进入胚胎取出裂殖细胞。行胚胎活检时,转动胚胎直至 V 形切口置于 3 点处,固定 胚胎,微管进入焦距,施少许压力向上压开三角形叶片即插入胚胎,能在不扭曲胚胎卵裂球 外形下吸出裂殖细胞,三角叶片在微管离去后复位,在移植过程中可保护胚胎。该术不同于 用微针在透明带上造一裂口的传统方法,是一种安全、简单、有效的机械性透明带部分切开 造口术。 Markus 用激光在透明带上打孔但尚未用于人胚检查。总之,如何提高显微活检技术 的准确性及有效性还需进一步研究。 2 如

4、何避免 PCR 中等位基因的缺失及提高 PCR 的效率 1985 年 PCR 技术建立后,Handyside 于 1990 年首先应用于临床 PGD,1994 年 Ray 利用单细胞底 物以 PCR 诊断囊性纤维病(CF)时,发现了等位基因的缺失现象(allele drop-out,ADO),即 :以单细胞底物诊断单基因缺陷病时,如在杂合子的单细胞中,两个等位基因之一未被扩增 。这是导致 PGD 误诊的主要原因。ADO 在理论上由 Navidi 和 Arnheim 在 1991 年提出,1994年才 在临床上引起足够重视。Grifo 在 1994 年、Verlinsky 在 1996 年相继报

5、道过 ADO 导致误诊的病 例。 Ray 在诊断 CFF508 基因突变时,出现了 25%的 ADO 率4。Levinson 在1992 年利 用多重 PCR 鉴定胎儿性别的研究中其 ADO 率是 21%。最低的 ADO 率是 Storm 在168 个杂合子细胞的 扩增中仅一个表现为 ADO(0.6%)1。在原位 PCR 中,ADO 的发生率也有 12%5 。 ADO 发生的原因主要为:染色体嵌合体,尤其是除了具有二倍体细胞外,有些细胞是单 倍体时,易致误诊,减少这类误诊的唯一办法是从 1 个囊胚中取 2 个细胞来分析。在操作前 溶细胞的方法对 ADO 率的影响较大,用强碱溶解,ADO 率较低

6、,Gitlin、Wu 等用强碱和 DTT及 蛋白酶 K 两种方法溶细胞,然后用 PCR 诊断 CFF508 时,ADO 率分别为 10%和19%。PCR 开始时 的变性温度也非常关键,变性温度分别为 90、93、96时,用 PCR诊断 CFF508 基因突 变时, ADO 率依次为 21%、13% 、5%6 。 此外,为了降低 ADO 率,除了上述严格的溶细胞条件、变性温度外,许多学者建立了一些 新方法。Findlay 提出荧光 PCR,即 PCR 产物通过荧光标记的引物被标记上了荧光,较容易检 测 ,此项技术较常规 PCR 灵敏 7,8。Sermon 利用荧光 PCR 诊断 CFF508 突

7、变,ADO 率 仅 5%,用常规 PCR 对比则为 21%1。Kuliev9利用细胞的第一、二极体 诊断 -地中海贫血时,从一个杂合子细胞中同时扩增二个突变基因,如扩增结果表现为纯 合子,则表明出现了 ADO。Sermon 又介绍了多态 PCR:扩增 CFF508 突变和其附近的具有多态 性的第六内含子。根据两个位点的一致性结果来做出诊断是否出现了 ADO,从而避免误诊 1 。 3 FISH 和原位 PCR FISH 运用于 PGD,首先是鉴别胎儿性别以避免性连锁遗传病的发生,因可 同时检测X、Y 染色体,准确性较 PCR 高;其次可用来诊断染色体非整倍体。重要的是 FISH 可 以诊断复杂的

8、染色体易位、转位等畸变,但目前关于这方面的进展不大,主要是卵裂球中期 核染色体不易获得;且每例病人都要用一种特异的 DNA 探针,探针的制备又较繁杂,一般实 验室无法开展。针对这种情况,许多学者进行了尝试:Munne10用自第一极体中 获得的涂染染色体去分析第一极体中的染色体易位。共检测 8 例平衡易位携带者,其中 5 例已 妊娠,2 例健康的新生儿娩出,使平衡易位携带者的流产率从 95%降到 12.5%;Conn 11 用点探针检测罗伯逊易位携带者的非整倍体,亦获得一定效果。但这两种方法只能检 测来自母体的易位情况,比较局限。湖南医科大学介绍了一种新的探针标记方法:直接对涂 染探针进行 PC

9、R 标记,通过合适的 PCR 引物扩增,把生物素渗入到被扩增的 DNA 链中,该技术 缩短了探针制备的过程12。有专家预言:随着 DNA 探针标记技术、制备技术、杂 交结果及图像分析技术的发展以及高分辨的 FISH 作图技术、比较基因组杂交技术的问世,FI SH 会得到不断创新和发展,尤其是染色体平衡易位的诊断将广泛应用于临床,从而可大大提 高 PGD 的准确性和 IVF 的成功率。 为了进一步提高以单细胞底物进行 PGD 的效率,Thornhill13提出了原位 PCR: 在固定于载玻片上的同一个单细胞上,先用 PCR 原位扩增,再用 FISH 检测。该技术可使性别 鉴定、单基因病和染色体病

10、的诊断同在一个细胞上进行,被称为目前最先进的技术。经过一 段时间的探索和研究,目前 PGD 中应用原位 PCR 时,PCR 的有效率为 65%,FISH 达 85%。遗憾的 是Rechisty 报道 ADO 率较常规 PCR 高。相信随着引物设计及荧光 PCR 与原位 PCR 有效的结合,原 位 PCR 的不足会得到克服且可能逐步替代 FISH 在 PGD 中的作用。 4 结语 经过近 10 年的发展,利用 PGD 已能成功地诊断囊性纤维化病、-地中海贫血,马凡综合征 、Staeinert 病、1- 抗胰蛋白酶缺乏病、Lesch-Nyhan 综合征等近 50 种单基因病及染色体 病。据美国的一

11、项问卷调查:PGD 避免了流产的痛苦,伦理上易于接受。但在临床应用中,P GD 仍有几个问题值得重视。首先,由于试管婴儿成功率较低,妊娠率约 20%,分娩率约10%, 而接受 PGD 的病人一般都有正常的生育率,故对他们而言临床妊娠率低难以接受。其次,PGD 费用昂贵,其研究工作主要集中在英美等发达国家,如何降低 PGD 的费用,从而使PG D 广泛开展,也是亟待解决的的问题。最后,PGD 的历史较短,对经 PGD 而诞生的儿童的未来 健康 状况,尚需长时间随访。有理由相信,随着分子生物学等技术的日新月异, PGD 的前景将是 非常令人振奋的! 作者单位:朱前勇(第三军医大学附属大坪医院妇产科

12、 重庆,400042) 颜建华(第三军医大学附属大坪医院妇产科 重庆,400042) 参考文献 1,Willy Lissens ,Karen Sermon.Preimplantation genetic diagnosis:curre nt status and new developments.Hum Reprod,1997;12(80):1756 2,Reubinoff BE,Shushan A.Preimplantation diagnosis in older patients to biopsy or not to biopsy.Hum Reprod,1996;11:20771 3,

13、Shee U C,Kuang H C,Ming Y W,et al.The simplified two-pipe tte techniqe is more efficient than the conventional three-pipette method for b lastomere biopsy in human embryoes.Fertil Steril,1998;69(3):569 4,Ray PF,Winston RML ,Handyside AH.Reduced allele dropout in single -c ell analysis for PGD of cys

14、tic fibrosis.J Assist Reprod Genet,1996;13(2):104 5,Rechitsky S,Freidine M,Verlinsky Y.Allele dropout in sequential PCR an d FISH analysis of single cell (cell recycling).J Assist Reprod Genet,1996;13(2) :115 6,Gitlin SA,Lanzendorf SE,Gibbons WE.PCR amplification specificity: incidence of alllele dr

15、opout using different SNA preparation methods for heteroz ygous single cell.J Assist Reprod Genet,1996;13(2):107 7,Findlay I,Quirke P,Hall J.Fluorescent PCR:a new technique for PGD of s ex and single gene defcts.J Assist Reprod Genet,1996;13(2):96 8,Sermon K,Lissens W,Messiaen L,et al.Preimplantatio

16、n genetic diagnosis of Marfan syndrome with the use of fluorescent poly merase chain reaction and t he automated laser fluorescence DNA sequencer.Fertil Steril,1999;71(1):163 9,Kuliev A,Rechitsky S,Verlinsky O,et al.Preimplantation diagnosis of t halassemias.J Assist Reprod Genet,1998;15(5):219 10,M

17、unne S,Morrison L,Fung J,et al.Reduction of spontaneous abortion aft t er preconception genetic diagnosis of translocations.J Assist Reprod Genet,1998; 15(4):290 11,Munne S,Jingly Fung,Michael J,et al.Preimplantation genetic analysis of translocations:case-specific probes for interphase cell analysis.Hum Genet,19 98;102(10):663 12,Lily.Construction and application of human chromosomal specific CNA p robe pools.Chin Med J,1996;109(2):112 13,Veiga A,Boada M,Barri PN.Preimplantation genetic diagnosis:indication s techniques and results.Contracept Fertil Sex,1998;26(4):568

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