1、园林植物与观赏园艺专业毕业论文 精品论文 多花相思离体培养与再生体系的建立关键词：多花相思 离体培养 愈伤组织 植株再生摘要：多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果
2、最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/
3、L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖
4、 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。正文内容多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较
5、强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基
6、为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实
7、验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在
8、MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果
9、如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179
10、；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤
11、组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent
12、 ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试
13、验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/
14、L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+
15、蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗
16、下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA
17、15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS
18、+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后
19、，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可
20、以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度
21、生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次
22、继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移
23、栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914
24、；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思
25、种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05
26、mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然
27、后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达
28、到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为
29、1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然
30、状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05
31、mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1
32、 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA0
33、2mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。
34、采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+
35、BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA
36、10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent ）Willd ）自然分布于澳大利
37、亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL 浓硫酸处理种子 10min 效果最好，发芽率可达 90。然后用 75酒精浸泡 10s，01升汞浸泡 15min，无菌水冲洗 7 遍，可以使污染率控制在3，最后接种到 MS 培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多
38、花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖 30gL，30d 后增殖数可以达到 2914；最佳二次继代培养基为 MS 培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖 30gL；30d 后增殖数可以达到 4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖 20g/L。30d 后增殖数可以达到 3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖 30
39、g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1 的效果最好，成活率达到 855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖 30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为 MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖 30gL。当光照强度为 1200Lx 时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在 MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L 培养基中，可使愈伤
40、组织分化率达到 89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖 30gL 培养基上，再生率为 98。在12MS 十 mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL 蔗糖培养基上，30 天后，小苗增殖数为 141。特别提醒 ：正文内容由 PDF 文件转码生成，如您电脑未有相应转换码，则无法显示正文内容，请您下载相应软件，下载地址为 http:/ 。如还不能显示，可以联系我 q q 1627550258 ，提供原格式文档。“垐垯櫃 换烫梯葺铑?endstreamendobj2x 滌?U 閩 AZ箾 FTP 鈦X 飼?狛P? 燚?琯嫼 b?袍*甒?颙嫯?4)=
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