1、 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 1 / 21标本采集方法标题 标本采集方法JCI 文档编码 HIM【2017】-LAB-WI-001-01适用部门 深圳蛇口门诊部页数 3生效日期 2017/7/3修订日期 2017/7/1回顾日期 2017/8/3管理者 章三审批者 李四任何打印或复印文件都被 视 作非控制文件，除非有原始 签 名的文件1目的 规范检验标本采集，保证检验结果质量。2适用范围 适用于负责标本采集相关检验人员及护士3术语与定义无4角色与职责检验相关工作人员及护理人员按照 SOP 操作，规范采集样本。5内容5.1 血液检验标本
2、采集方法： 血液检验标本分为全血、血浆、血清等。全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适 合于临床化学标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 2 / 21和免疫学的检测。按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。绝大多数检查 采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要 用于各种微量法检查或大规模普查。 静脉血是最常用的实验室检查标本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。基本原理 是将双向针的一端在持针器的帮助下刺入
3、静脉，有回血后将另一端插入真空试管内，血液 在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染， 并有利于标本的转运和保存。标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。5.1.1 静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置： a.止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过 40 秒为宜， 否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、 Ca2+、肌酸激酶升高等。b.采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能避
4、免在输液同 时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。c.避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净避免特别用力抽吸和推注、避 免化学污染和细菌污染引起的溶血。因为红细胞的某些成分与血清(浆)不同，样本溶血可使 红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。d.血样的采集：血样要求在每一天的同一时间采集，理想的时间是早晨 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 3 / 217：00 到 8：00， 尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。最后一次食物和液体摄入应在前 一天下午 6：00 到 7：00
5、 (急诊检验例外)。血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。 血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。e.标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。当取血不顺利时,切忌在同一处反复 穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。f.采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。g.微量元素测定采集标本的注射器和容器不能含游离金属。h.采集样品所用材料的安全处置： 使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内或毁型器内 进行安全处置，禁止对使用后的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片 等锐器物；注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入
6、黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不 得擅自废弃。 5.2 临床化学/免疫检验标本 临床化学/免疫检验多用非抗凝血标本,最好使用真空负压采血管。 标本采集主要注意事项有：5.2.1 化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采 l 管血； 5.2.2 采血量视检查项目多少不同而异，通常为 4.05 .0ml；5.2.3 多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：血培养无添加剂管凝血管/有添加剂管,有添加剂管的顺序为：橼酸盐管 肝素管 EDTA 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-0
7、1 HIM USE ONLY 4 / 21管 草酸盐氟化钠管 5.2.4 不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本收集 后，须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来，避免由此而影响检验结果的准确性。 从血液标本采集开始，必须在 2h 内将全血处理为血清或血浆。 a.血清(非抗凝血)：采血后标本于 2225(室温)1530min 后可自行(自发)完全凝固， 禁用木棍和玻棒等剥离凝块;冷藏标本凝集较慢，加促凝剂者凝集加快。b.血浆(抗凝血)：应采用抗凝管采血,采血后立即颠倒混合 510 次，采血后数分钟内可 离心分离血浆。c.冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分(
8、抑制细胞代谢)的检测项目，标本于 28 冷藏(标本采集后立即置于冰箱中，冷藏必须充分)；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、 胃泌素、甲旁素、PH血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。全血标本一般不冷藏，血钾测定标 本冷藏不得2h。全血标本切忌冷冻。 d.代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未 分离情况下血标本中 Glu，2225稳定 24h28稳定 48h；氟化钠不适用于新生儿及 儿童的 Glu 测定(因儿童 PCV 高，细胞糖酵解难以控制)；氟化钠一麝香草酚混合剂不适合 酶学检测(因氟化钠一麝香草酚混合剂抑制酶活性)） ；甲醛草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖 测定。
9、标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 5 / 215.3 红细胞沉降率（血沉，ESR）检测标本 静脉采集枸橼酸钠(109mmolL，即 32.06gL)抗凝血(枸橼酸钠抗凝管采血)，黑帽管。 采血注意事项： 、单独采 1 管血，准备采血至 2 ml 刻度线（抗凝剂：全血=1：4） ； 、采血后立即上下颠倒混合 510 次； 、采血后应尽快送检（必须 2h 内检测） 。 5.4 血常规（全血细胞分析）检验标本 一般用 EDTA 1.52.2mgml 抗凝(EDTA 抗凝采血管-紫帽管)。 采血注意事项： a.采血后立即上下颠倒混匀，510 次不可
10、用力震荡； b.应按抗凝管刻度采血至 2ml，可不用空腹； c.采血后应尽快送检(需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过 2 小时 WBC 形态会发生改变)； d.血型与血常规可采 1 管血。 5.5 75 克葡萄糖耐量试验（OGTT）/胰岛素释放试验/C-肽释放试验 a.病人准备：试验前 3 日，每日进食碳水化合物量不低于 250-300 克，且维持正 常活动，影响试验的药物（如：咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等）应在 3 日前停用， 试验前病人应 1016 小时不进食。b.标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服 75 克葡萄糖，再于给糖后 0.5、1、2、3 小时各采血
11、 2ml /1 次（共 5 次） 。 c.标本保存：采血后 1 小时内分离血清并及时冷藏送检或采用血糖专用抗凝管采 血，于 28保存。 、注意事项：胰岛素测定受溶血影响较大，采血时应避免溶血。 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 6 / 215.6 高血压系列检验标本5.6.1 高血压三项（肾素、血管紧张素 I、II）a.病人准备： -阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平， 一般要在停药后 2 周测定肾素活性(PRA)，利血平等代谢慢的药物应在停药 3 周测定。不宜 停药的病人改服胍乙啶等影响 PRA 较小的降压药。钠
12、摄入量影响机体 PRA 水平，故病人 测定 PRA 前 3 天应适当减少食盐摄入量，最好同时测定取血前 24 小时尿钠含量，以供分 析 PRA 结果时参考；b.标本采集：静脉取血 45ml，拔除针头后缓慢注入到专用抗凝管中,盖好管塞后上 下颠倒 5 次,混匀后 2500 转/分,离心 510 分钟,分离血浆,将血浆装入专用血浆管后低温送检。 如不能立即送检,需尽快冰冻保存（-15） 。溶血标本不能检测； c.标本类型、标本量：专用抗凝管采血，分离血浆，取 2ml 送检； d.标本保存：低温冰箱保存（-15以下） ，可保存 2 个月；e.注意事项：申请单上应注明抽血时的体位(卧位：病人在早上 6
13、-8 时起床前，取静 脉血；立位：病人起床后活动 3 小时，取静脉血。)和饮食情况(普食饮食、低钠饮食)；标 本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝管等均可使结果受到影响。5.6.2 醛固酮 a.病人准备：留样前应停服利尿剂至少 3 周，停服抗高血压药物 1 周； b.标本采集：血浆醛固酮测定应采用肝素抗凝，采集后立即分离血浆，标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 7 / 21置-20保存 待测；尿液标本则留取 24 小时尿量，用 1015mL 浓盐酸防腐；c.申请单上注明：抽血时的体位（卧位、立位）和饮食情况（普食饮食、低钠
14、饮食） ； 尿液标本要准确记录 24 小时尿量。 5.7 皮质醇标本采集及注意事项 正常人皮质醇的分泌存在昼夜节律，一般为早上 8 点或下午 4 点采血，送检时请务必 在申请单上注明采血时间。 5.8 流式细胞术检测项目的标本采集及注意事项5.8.1 淋巴细胞亚群系列 标本要求：EDTA 或肝素抗凝全血 2ml（推荐 EDTA 抗凝） 注意事项：该系列项目在不同年龄段的细胞数参考值不尽相同，所以送检时请务必在 申请单上注明病人年龄。5.8.2 白血病免疫分型 标本要求：肝素抗凝骨髓或全血 2ml 注意事项：请使用白血病免疫分型专用申请单 。5.8.3 人类白细胞抗原 B27 检测（HLAB27
15、）/ 阵发性睡眠性血红蛋白尿症（PNH）检 测 标本要求：EDTA 或肝素抗凝全血 2ml 备注：保证新鲜标本，流式细胞术检测项目需要 24 小时内送检； 5.9 微量元素检测标本采集要求 5.9.1 所有采血人员要经过严格培训并熟悉采血过程，知晓操作技术对微量元素（尤其 是铅和锌）检测质量的影响。5.9.2 采血人员应戴乳胶或聚乙烯手套，若手套涂粉，需用静脉采血皮肤清洁法处理手套 后进行操作。 5.9.3 血铅检测采血时按顺序用 0.2%硝酸、纯水、碘酒、酒精清洁采血区皮肤，防止环境 对血铅检测的污染。 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY
16、8 / 215.9.4 橡皮塞对锌有污染，故普通采血管不可使用，请使用本中心提供的专用管。5.9.5 采集方法：采集静脉血 0.5-1.0mL，采集后马上轻轻颠倒混匀，粘上条形码，装入 自封袋送检。5.9.6 如不能及时送检，应放置 2-8冰箱保存。5.9.7 标本凝固或含凝块，不能检测。 5.10 遗传学检测标本采集要求 5.10.1 标本采集：外周血标本可使用中心配送的肝素抗凝管（遗传专用）和采血针进行采集， 采集后立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血；脐带血标本、骨髓标本可以在穿刺成功后， 打开中心配送的肝素抗凝管盖，将 脐 带 血或骨髓注入采集管中，立即将试管轻轻颠倒混匀， 以免凝血，请注
17、意无菌操作，不要污染管盖。请避免使用注射器采集标本后直接注入采集 管的方式进行标本采集，以免引起溶血；请勿使用 EDTA 等抗凝管采集标本。 5.10.2 标本量：外周血、脐带血、骨髓各 4ml； 5.10.3 标本送检：合格标本须于采血后当天送至遗传实验室，故请于标本采集后及时通知艾 迪康工作人员接收标本；标本有溶血、凝血现象，也视为不合格标本。骨髓标本应尽快送 至实验室。 5.10.4 标本保存：标本采集后置于 1825保存，不可冷冻，不可放置于高温环境中。 5.10.5 申请单填写：请完整填写申请单，尤其是标本采集时间、性别、病史、临床诊断等。 标本采集方法HIM【2017】-LAB-W
18、I -001-01 HIM USE ONLY 9 / 215.11 基因检测标本采集要求 5.11.1 所有用于基因诊断的标本必须用无菌试管或容器留取，严禁使用肝素抗凝管，采集标 本时注意无菌操作。5.11.2 为避免污染，送检基因诊断标本项目需单人单项目单管。5.11.3 采集方法： a.血液标本 抽取病人静脉血，置无菌试管中室温自然凝固或 2000 转/分离心，取分离出的 EDTA 抗凝血 浆/血清送检； b.女性分泌物标本 分泌物标本采样应在非月经期进行；采样前 3 天内不使用阴道内药物，不冲洗阴 道；24 小时内不应有性行为； 采集时先用棉签将宫颈口或尿道口过多的分泌物轻轻擦去，更换棉
19、拭子，将棉拭 子伸入宫颈，通过上皮交界处，旋转 35 周，以保证取得较多的柱状上皮标本，对于怀疑 HPV 感染的患者，尽量采集病变部位标本，可提高 HPV 的检出率。将取样后的棉拭子放入 配套的软管中，旋紧管盖； 男性分泌物标本 先清洁尿道口，将棉拭子伸入男性尿道 1cm，旋转 35 次获得标本，将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖； 疱疹液或疣体标本 对于生殖器或肛周有疣状体增生，怀疑为尖锐湿疣者，宜直接采集疣体组织置于标本管中 送检。 备注：疣体标本时，需要在申请单上的标本类型栏处写上“疣体” 。5.11.4 标本保存：检测靶核酸为 DNA 的标本，可在 28下保存 3 天；检测标本
20、采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 10 / 21靶核酸为 RNA 的标本，应保存在-20下。 5.12 骨髓检查的要求和注意事项 5.12.1 涂片要求：二张血片，六张骨髓片，怀疑白血病则需八张骨髓片。 骨髓血片注明“B” ，骨髓片注明“M” ，以示区别。 5.12.2 申请单注意事项：a.病例摘要:应填写全面，尤其是肝、脾、淋巴结、出血状况等与血 液病相关的症状以及药物的应用等均应填写清楚； b.化验结果：血常规结果一定不能缺，如 果可能，MCV、MCH、MCHC 及分类也一并填上； c.采取骨髓部位也应填上，如果采取骨髓时不顺，应重抽，以免
21、耽误 病人； d.写上主治医生联系方式，如科室电话、手机号码等（以便与临床密 切联系） 。 5.13 尿液常规检验标本采集 5.13.1 尿标本种类 按检查目的，常可采用下列标本： a.晨尿：最好，安静状态下留取清晨第一次尿，该标本为浓缩尿其细胞和管型等 形态完整，适合做各种有形成分的检查和尿蛋白、尿糖等项目的测定。 b.随机尿：较常用，适用于门诊和急诊病人常规检验结果易受多种因素影响。 c.空腹或餐后尿：适用于糖尿病、尿胆原、尿蛋白等的检查。 d. 24h 尿：用于尿液成分定量检查分析： 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 11 / 212
22、4h 尿采集方法：留尿当日早晨 8 时排空尿液， 之后每次排尿均收集于一大容器内 至 次日早晨 8 时最后一次尿液共 24 小时之间的所有尿液全部收集于洁净容器内。在收集期内 每次尿液标本均应放冰箱(28)或阴凉处保存全部收集完毕测量并记录 24h 总尿量， 混匀后取 20-30 毫升置于有盖容器内送检即可。 24h 尿可用于检测 Cr、BUN、K、Na、CL、Ca、P、UPR、UAER 等 e.特殊实验尿(如 3h、8h、12h 等计时尿和餐后尿等)，则应按医嘱要求进行留尿，并 注明用药时间，便于分析比对。f.清洁尿(中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿)：用于病原微生物学培养、鉴定和药敏。 5.13
23、.2 尿液标本收集容器要求 a.清洁、干燥、有盖、便于标记和转送、一次性使用，有较大开口便于收集；b.避免阴道分泌物、精液、粪便等污染，还应注意避免烟灰、纸屑等异物混入； c.无干扰化学物质(如表面活性剂、消毒剂)混入，不可使用未经洗涤的装药物或试 剂的器皿收集标本； d.能收集足够尿液，最好大于 50 ml，如收集定时尿，容器应足够大,并加盖，必要 时加防腐剂； e.如需培养应在无菌条件下，用无菌容器收集中段尿液。5.13.3 尿液采集方法 尿液常规检查标本应按以下原则进行采集： 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 12 / 21a.尿液检
24、验最好留取新鲜标本及时检查，否则尿液生长细菌，使其中的化学成分发生变 化。新鲜晨尿最佳,以清晨第一次尿为宜，较浓缩，条件恒定，便于对比。门、急诊患者亦 可随机留取。在留取 24h 或 12h 尿液时，尿液标本最好至冰箱保存，也可根据检测目的加 入防腐剂(本室未要求使用防腐剂)。 b.尿标本的采集方法多采用自然排尿法，需要注意避免阴道分泌物、精液、粪便等污染； 对自然排尿困难或需细菌培养者，可在无菌操作下用导尿法或膀胱穿刺法采集。 c.尿中某些化学物质及有形成分不稳定，一经排出后易发生物理、化学变化；而尿中原 有或污染的细菌生长也可导致成分改变，如葡萄糖被分解。因此，采集的尿应加盖后尽快 送检，
25、在采集后 2h 内完成有关检查。d.如不能及时送检或收集较长时段尿样,可采取化学防腐(不能用于微生物检查)、冷藏等 保存措施；尿液标本冰箱可保存 68h 但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出。e.根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为： 甲醛(formalin)，用于尿液有形成分检查，浓度为 400mgL 尿液，即 40； 甲苯(toluene)，常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，520m1L 尿液； 浓盐酸（hydrochloric acid） ，用于定量测定尿醛固酮、儿茶酚胺等，浓度为 1 m1 L 尿液。 f.沉渣检查：清晨空腹第一次尿，应在 1 h 内
26、送检。标本置于干燥、洁净标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 13 / 21的容器尿杯中， 至少 10 m1。一般情况下，由患者自己采集中段尿。女性患者应清洗外阴部后留取。g.特殊试验外，晨尿或随机尿留取中段尿送检，女性在经期不宜做尿液检查。 5.13.4 尿液采集注意事项 5.13.4.1 尿液标本必须新鲜，并按要求留取。从排出到检测应在 2h 内完成，否则会影响尿化学 成分及有形物质的改变。如不能及时分析，应置 4下冷藏保存，但冷藏时间最长不得超 过 8h。有时冷藏后一些结晶析出会影响结果,因此从冰箱取出的尿标本应在室温中放置一定时间,使尿
27、标本温度平衡到室温后再进行混匀，然后取样检测。尿标本不能冰冻，否则会影响某些成分的检测。如无特殊要求，均应采集清晨起床后的第一次尿，即晨尿检查。对于门诊和急诊的患 者，可采集随机尿，易受食物、体位、活动等的影响。 5.13.4.2 标本留取后应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解或被污染等。送检标本时要置于有 盖容器内，以免尿液蒸发影响检测结果。5.13.4.3 常规检验留取中段尿送检。细菌检验尿标本留取方法见后述。5.13.4.4 特殊检验项目标本留取请随时与相应检验科室联系。 5.13.4.5 尿总蛋白(UPR)测定注意避免血红蛋白的污染,否则会使尿总蛋白假性升高；尿液中如含 有免疫球蛋白轻链
28、(如本一周蛋白)会使蛋白假性降低；应用多肽类药物治疗的病人，血液中 的多肽会排泄入尿，可导致尿蛋白假性升高，如怀疑尿中有此成分，建议将尿液浓标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 14 / 21缩后作 蛋白电泳。 5.14 粪便常规检验标本采集 5.14.1 粪便常规检查标本采集方法及注意事项： 5.14.1.1 采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的 粪便 35g，必要时可肛拭子采取，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内，贴好标识 送检。标本容器最好用内层涂蜡的硬纸盒，便于检查后焚毁。细菌检查的粪便标本应收集 于
29、灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。 5.14.1.2 盛粪便标本的容器必须有盖，有明显标记。要选取粪便的脓、血、黏液等异常成 分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；采取标本后及时送检， 否则可因 PH 及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。 5.14.1.3 不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结 果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该 从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。 5.14.1.4 做大便隐血试验时，应嘱患者于检查前 3d 内禁食肉类、含动物血
30、的食物、某些蔬 菜，禁服铁剂和维生素 C 等对实验有干扰作用的药物。选取外表及内层粪便收集于合格容 器内及时送检，长时间放置可使反应的敏感度降低。 5.14.1.5 检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜 12pm 或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭 取标本，并立即送检。标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 15 / 215.14.1.6 检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如 须 孵 化毛蚴应留取不少于 30g 的粪便， 并尽快送检必要时留取整份粪便送检。 5.14.1.7 检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材， 并立
31、即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。 5.14.1.8 细菌检验用标本应全部用无菌操作收集于灭菌封口的容器内。特殊检验项目留取 标本时请预先联系。 5.15 前列腺和精液检查 5.15.1 前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出 前列腺液，可检查按摩后的尿液。疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。 一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔 35 天后重新复查。 5.15.2 精液采集最好在实验室附近，室温应控制在 2035,采集标本前禁欲 37 天采集 精液前排净尿液。可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入洁
32、净、干燥的 容器内。因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。一般应间隔 12 周检 查一次，连续检查 23 次。 5.16 微生物检验标本采集 : 微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的 关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如 SARS、炭疽、肺鼠疫等)患者采集标本时,必须按国家 规范化要求严格注意生物安全；医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采 集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 16 / 21传和指导。5.16.1 微生物学检验标
33、本采集、运送、验收和处理注意事项 5.16.1.1 标本采集 a.申请单标记必须清楚(姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时 间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室能够合理选择培养环境和培养基； b.尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检； c.标本采集应严格执行无菌操作； d.咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；e.痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检； f.采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。5.16.1.2 标本运送 a.标本采集后应尽快送到微生物实验室；b.标本采集后在室温下超过 2h 未送达实
34、验室，可视为不合格标本。5.16.1.3 标本验收 a.实验室只能接受和处理合格标本； b.实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。 5.16.1.4 注意事项 a.微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果并给评价其意义带 来麻烦甚至误导。 b.微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌 也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 17 / 21的损害以及经济和时间的浪费。 c.某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。室
35、温 放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。 d.厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。 5.16.2 空气培养标本采集方法 5.16.2.1 采样时间：选择消毒处理后与进行医疗活动之前采样。 5.16.2.2 采样高度：与地面垂直高度 80150cm。 5.16.2.3 布点方法：室内面积30 m2，设一条对角线上取三点，即中心一点，两端各距墙 1m 处取一点；室内面积30 m2，设东、南、西、北、中 5 点，其中东、南、西、北距墙 lm。 5.16.2.4 采样方法：用 9cm 直径普通培养琼脂平板在采样点暴露 5 分钟后送检培养。 5.1
36、6.2.5 标本保存： 采样后必须尽快送检。 在平皿上注明各采自哪个室，用胶布把平皿和平皿盖子固定好以免在送检途中平 皿和平皿盖子分离而造成污染。 将封好的平皿装入自封袋，并将自封袋封好后送检。 5.17 病理标本采集 5.17.1 组织活检标本5.17.1.1 病人知情同意 所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 18 / 21活检前均应向患者和或其家属说明活 检病理诊断的必要性。特别向其说明，病理诊断并不是万能的，有时病理活检并不能得出 明确诊断，使患者和/或其家属了解病理诊断的局限性，使其对活检不能
37、明确诊断表示理解， 必要时（根据各自医院的相关规定）和患者签署知情同意书。5.17.1.2 申请单填写 病人信息对病理诊断非常重要，临床医师应认真、详细填写申请单各项内容，特别要 填写有意义的阳性体征、影像学检查及其它检验结果，以前做过病理学检查（包括细胞学 和组织学）的，应填写检查结果，在本中心检查的应填写相应的病理号。妇科标本应填写 月经史、妊娠史。字迹应清晰可辨。5.17.1.3 样本获取 （）组织样本获取 1）对于病理诊断来说，组织越多，诊断成功率越高，因此临床医师在切取组织时， 在病人状况允许的情况下，尽量多取组织；2）取材时应尽量获取未坏死组织，较大肿瘤中央区域常常坏死，做穿刺时应
38、避开 坏死区域； 3）取材动作应轻柔，尽量避免挤压组织； 4）肿瘤切除标本应标记标本的方位，并在申请单中记录清楚，以便在发报告时报告各切缘情况，建议对下述标本进行方位标记： 带皮肤的肿瘤在标本的十二点位用缝线标记； 不带皮肤的软组织肿瘤、乳腺肿瘤、甲状腺肿瘤切除标本标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 19 / 21分别在十二点位和前 面用长度明显不同的缝线标记； 宫颈环切（leep 术）标本在 12 点位用缝线标记； 肠管切除标本于近断端用缝线标记； 肾切除标本分别用长度明显不同的缝线标记输尿管与肾血管切缘； 膀胱切除标本分别用长度明显不同的
39、缝线标记左、右输尿管及尿道切缘； 子宫全切、次全切标本可在子宫前壁用缝线标记； 其它部位肿瘤以方便病理医师识别切缘为原则进行标记。 （）组织标本固定1) 标本应完整送检，尽量不要将同一份标本分开，分送不同单位作检查；不要任 意将标本切开，如需要将标本切开，应按同一方向将其切开；2) 标本应及时固定，除特殊说明外组织标本一律用 10%的中性福尔马林固定； 骨髓活检、睾丸活检标本用 Bouin 液固定； 3) 电镜标本用 2.5%戊二醛固定； 4) 固定液与标本体积比应大于 10：1，较大标本不能满足上述条件的至少应保证 组织能完全浸泡在固定液中； 5) 标本应尽可能用公司统一配送的标本瓶装载，标
40、本瓶口应足够大，保证取、 放标本自如； 6) 标本瓶应清楚标记病人姓名及标本类型、部位、组织块数量等信息。 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 20 / 215.17.2 细胞学取样5.17.2.1 宫颈刮片 a.检查前 48 小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药； b.避开月经期； c.充分暴露宫颈，以宫颈外口为圆心，在宫颈外口鳞柱上皮交界处和宫颈管内， 用特制刮板或宫颈刷轻轻刮取或刷取 1-2 周； d.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材； e.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材； f.将刮下细胞立即一次涂在干净玻片上
41、，顺同一方向，轻轻均匀推平于玻片的右 侧 2/3，切忌来回涂抹； g.在玻片磨砂端清楚写上病人姓名/编号； h.立即将涂片置 95%酒精固定至少 15 分钟； i.从 95%的酒精中取出玻片，晾干，根据切片的多少或与病理实验室的约定，将 细胞片按顺序排放于自封袋或切片盒内。5.17.2.2 液基细胞 a.检查前 48 小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药； b.避开月经期； c.充分暴露宫颈，将扫帚状采样器的毛刷中央部分轻轻插入宫颈口，按同一方向 旋转 5-10 圈（切忌来回转动） ； d.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材； e.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材； f.
42、将毛刷置于装有保存夜的专用瓶内，拧紧瓶盖； 标本采集方法HIM【2017】-LAB-WI -001-01 HIM USE ONLY 21 / 21g.在标本瓶的标签上清楚填写受检者的姓名、年龄，并和申请单核对无误。 5.17.3 胸、腹水 a.血性胸、腹水用肝素抗凝； b.液体尽量多送(100ml 以上为宜)，并及时制片。 5.17.4 痰 a.可以送清晨第一口痰，但不局限于第一口痰，血痰为好； b.一定是深咳出的痰，而不是唾液； c.放在密封的容器内送检，以防标本干涸； d.支气管镜检查后送检第一口痰(因为第一口痰阳性率较高)； e.最少应连续送三天； f.及时送检、及时制片，避免细胞退变。 5.17.5 尿液检查 a.可以送清晨第一次尿，但不局限于第一次尿，血尿可随时送检； b.一次尿应全部送检，标本量多可增加阳性率；c.膀胱镜检查后第一次尿阳性率较高，应送检； d.至少连续送三天； e.标本应及时送检、及时制片，避免细胞退变。6参考无7相关文件无
