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SDS-PAGE蛋白质胶内酶切.doc

上传人:精品资料 文档编号:10446610 上传时间:2019-11-13 格式:DOC 页数:1 大小:20.67KB
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1、蛋白质胶内酶切步骤一、 溶液准备考染脱色液:50mM NH4HCO3/ACN(1:1 ,vol/vol) ;银染脱色液:30mM K3Fe(CN)6/Na2S2O3(1:1,vol/vol);铁氰化钾/ 硫代硫酸钠覆盖液:25mM 碳酸氢铵溶液;酶液:2ug 分装后的 promega 质谱级胰酶,用 160ul 覆盖液充分混和溶解;萃取液:5%甲酸/乙腈(1:2 ,vol/vol) ;二、操作步骤1. 水洗胶块 2 次,吸走液体;2. 胶块脱色。1) 考然胶块:加考然脱色液 100ul(溶液的量视胶块具体大小而定)室温脱色 1h左右,直至胶块的颜色完全褪去,吸走液体;水洗胶块 2 次,将脱色后

2、的染料洗去,吸走液体;2) 银染胶块:加银染脱色液 50ul(溶液的量视胶块具体大小而定)室温脱色5min,至胶块颜色完全褪去;迅速将脱色液吸走,并加水终止;水洗胶块 3次,至胶块变得完全无色透明;3. 胶块脱水。加 50%ACN 溶液,让胶块脱水;再加 100%CAN,让胶块变白完全脱水;分别吸走液体;4. 还原烷基化(SDS 一维电泳条带,请做此步;2D 电泳点不需要此步)1) 加入 50ul 10mMDTT 溶液(溶于 25mM NH4HCO3) , 56水浴 50min;离心,吸走液体;2) 加入 50ul 55mM IAA 溶液(溶于 25mM NH4HCO3) ,避光反应 15min;吸走液体;3) 加入 100ul 水洗胶块,将反应剩余液体吸走;4) 胶块脱水,重复步骤 4;6加入胰酶 5-20ul(具体视胶块大小而定) ,让胶块充分吸胀,变透明 20min,再剩余 1-3ul 的酶液;7. 37 水浴过夜 16h;8. 若做 MALDI-MS 分析,则直接取酶解液上清点样做质谱即可;若做 ESI-LCMS 分析则需要萃取胶内的多肽,分别加 100ul 萃取液,超声 10min 萃取两次,冷冻干燥待做 LCMS;

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