1、生物化学实验技术课程作业 第 1 页蛋白质含量测定法考马斯亮蓝法实验目的学习、掌握考马斯亮蓝法（Bradford 法）测定蛋白质含量的方法实验原理 （ 蓝 色 ）变 为氨 基 酸芳 香 族碱 性染 料考 马 斯 亮 蓝 磷 酸 nmG59250max 器材与试剂器材722 型可见光分光光度计、漩涡混合器、试管 16 支试剂1.标准蛋白质溶液，用牛血清清蛋白（BSA） ，配制成 1.00mg/ml。2.考马斯亮蓝 G-250 染料试剂：称 100mg 考马斯亮蓝，溶于 50ml 95%的乙醇后，再加入 120ml 85% 的磷酸，用水稀释至 1 升。实验方法标准方法1.取 10 支试管，分别编号
2、后按 表 1 剂量依次加入标准蛋白（或未知蛋白） 、去离子水和考马斯亮蓝染料。每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。2.加完染料 20min 后，使用 722 分光光度计，塑料比色皿，在 595nm 处测量吸光度A595。3.用标准蛋白浓度（mg/ml）为横坐标，用 A595 为纵坐标，进行直线拟合，得到标准曲线。根据测得的未知样品的 A595，代入公式即可求得未知样品的蛋白质含量。根据所测样品的吸光度,在标准曲线上查得相应的蛋白质含量,按下式计算:样品蛋白质含量(g/g 鲜重) = ）测 定 时 提 取 液 体 积 （）样 品 重 （ ）提 取 液 总 体 积 （）查 得 的 蛋 白 质
3、（ mlg/SDS 干扰实验1.取 5 支试管，分别编号后按表 2 剂量依次加入标准蛋白、SDS、去离子水和考马斯亮蓝染料。每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。2.加完染料 20min 后，使用 753 分光光度计，塑料比色皿，在 595nm 处测量吸光度A595。实验数据与结果分析（一）标准方法的数据和图表 1 考马斯亮蓝标准法实验表格生物化学实验技术课程作业 共 4 页2管号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10标准蛋白质（1.00mg/ml） 0 0.01 0.02 0.04 0.06 0.08 0.10未知蛋白质（约 0.5mg/ml） 0.04 0.08 0.10蒸馏水 0.
4、1 0.09 0.08 0.06 0.04 0.02 0 0.06 0.02 0考马斯亮蓝G-250 试剂 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0对应的吸光度A595 根据表 1，以 A595 为纵坐标，标准蛋白质量 /（g）为横坐标，作图 1。图 1 考 马 斯 亮 兰 标 准 法 (参 考 )y = 6.1884x + 0.2287R2 = 0.994200.20.40.60.810 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12标 准 蛋 白 质 量 /（ g）A595图 1 考马斯亮蓝标准法根据线性拟合公式 y=ax+b 计算所测溶液的
5、蛋白质的含量。（二）SDS 干扰数据和图表 2 考马斯亮蓝 SDS 干扰实验表格管号 1 2 3 4 5 6标准蛋白质（1.00mg/ml） 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1SDS (1mg/ml) 0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8蒸馏水 0.9 0.8 0.7 0.5 0.3 0.1考马斯亮蓝G-250 试剂 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0对应的吸光度A595生物化学实验技术课程作业 共 4 页3根据表 2，以 A595 为纵坐标， SDS 浓度为横坐标，作图 2。图 2 考 马 斯 亮 兰 SDS干 扰 实 验 图 (参 考 )00.10.20.30
6、.40.50 0.2 0.4 0.6 0.8 1SDS浓 度A595图 2 考马斯亮蓝 SDS 干扰实验理论上，十二烷基硫酸钠(SDS)对考马斯亮蓝法测蛋白质含量有干扰，随着 SDS 浓度的增加，其混合液的 595nm 处的吸收峰逐渐降低，而后有一小段回升，最后趋于渐近线。结论：1 考马斯亮蓝标准法测得未知溶液中蛋白质含量为 x mg/ml。2 干扰考马斯亮蓝方法的物质中，SDS 的干扰分析情况。干扰实验结果分析 ：当溶液中存在一定量的 SDS 后所测得的吸光度比正常值相对减小。但是随着SDS 浓度的增加，吸光度的减小量应没有呈现出很明显的规律。从 SDS 与蛋白质的作用机理来看，SDS 可以
7、断开分子内和分子间的氢键，破坏蛋白质的二级和三级结构。SDS 和蛋白质结合后使蛋白质 -SDS 复合物上带有大量的负电荷，平均每两个氨基酸结合一个 SDS 分子，这时各种蛋白质分子本身的电荷完全被 SDS 掩盖。由于 SDS 的存在，阻碍了染料与碱性氨基酸和芳香族氨基酸的结合，使得吸光度减小。由于 SDS 与染料分子对蛋白质的竞争结合，使得显色减弱，吸光度值降低，因此在曲线前段呈下降趋势；但由于 SDS 破坏氢键，使得蛋白质的空间结构更加伸展，一些原来包裹在结构中的碱性氨基酸和芳香族氨基酸暴露出来，所以会有少量的吸光度回升；但最终SDS 与蛋白质的结合达到所处溶液条件下的“饱和”时，过量的 S
8、DS 就不起作用了，曲线是最后为平缓段。要去除 SDS 的干扰，可以利用它与 K+结合生成沉淀的性质将其去除。K +对考马斯亮蓝方法不产生干扰。思考与讨论1.用考马斯亮蓝法 G-250 测定蛋白质含量有何特点，操作过程中应注意什么？生物化学实验技术课程作业 共 4 页4答：Bradford 法的优点是（1）灵敏度高，其最低蛋白质检测量可达 1g。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大，蛋白质-染料复合物有更高的消光系数，因而光吸收值随蛋白质浓度的变化很大。（2）测定快速、简便、只需要加一种试剂。完成一个样品的测定，只需要 5min 左右，颜色在 5min 至 20min 之间稳定性也很好
9、。（3）干扰物质相对其它方法少。缺点是（1）由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford 法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差。（2）仍有些物质干扰此法测定：去污剂、Triton X-100、十二烷基硫酸钠（SDS）和 0.1mol/L 的 NaOH。（3）标准曲线也有轻微的非线性。 操作注意事项：不可使用石英比色皿，可用塑料或者玻璃比色皿，使用后立即用少量 95%的乙醇荡洗，以洗去染色。塑料比色皿决不可以用乙醇或丙酮长时间浸泡。2.考马斯亮蓝 G-250 和 R-250 各有何特点，在电泳染色方面有何异同？答：考马斯亮蓝 G-250 和 R-250 的结构式不同，配方
10、不同，染色方法也适合于不同性质的蛋白。考马斯亮蓝 R-250 即三苯基甲烷。每个分子含有两个-SO 3H，偏酸性，与蛋白质的碱性集团结合。在一定 pH 时，染料蛋白复合物可以被完全解聚。与不同蛋白结合呈现基本相同的颜色，并且在比较宽的范围内(15-20g)，扫描峰的面积与蛋白量有线性关系。通常用先固定，再进行染色和脱色的方法。考马斯亮蓝 G-250 即二甲花青亮蓝，其染色方法经常是对蛋白质同时进行固定和染色。这种方法的特点是快而简便，有时甚至不需脱色。但灵敏度略逊于 R-250。同时考马斯亮蓝 G-250 对小肽染色效果很好。3.试述几种主要干扰物质对考马斯亮蓝 G-250 蛋白测定法测定结果
11、的影响及其作用机理。答：SDS 的存在会使相同条件下的吸光度值减小，其作用机理为：断开分子内和分子间的氢键，破坏蛋白质的二级和三级结构。SDS 和蛋白质结合后使蛋白质-SDS 复合物上带有大量的负电荷，平均每两个氨基酸结合一个 SDS 分子，这时各种蛋白质分子本身的电荷完全被 SDS 掩盖。由于 SDS 与染料分子与蛋白质的竞争结合，会使显色减弱，所以吸光度值减小。Tris，乙酸，2-巯基乙醇，蔗糖，甘油， EDTA 及微量的去污剂如 TritonX-100，玻璃去污剂有少量颜色干扰，用适当的缓冲液对照很容易除掉。4.说明各种蛋白质含量测定法中哪几种可以测出蛋白质的绝对含量，哪几种只能测定其相
12、对含量，为什么？答：严格地讲，只有凯氏定氮法可以测定蛋白质的绝对含量，因为每 6.25 蛋白质含 1g 氮，所以，通过氮含量的测定，可以得到蛋白质的绝对含量。其他的几种方法，由于都使用了标准蛋白制作标准曲线，所以，所测得的未知蛋白的含量，都是相对于标准蛋白含量而言的。参考资料：1 王德利等.食品中蛋白质的快速消化简便测定法.黑龙江八一农垦大学学报 . 15（4）：8082 2余冰宾.生物化学实验指导.清华大学出版社.20043 南亚,李宏高.考马斯亮蓝 G-250 法快速测定牛乳中的蛋白质.检测与分析.2007.10(12)：4242 4黄婉玉等.考马斯亮蓝法测定果汁中蛋白质的含量.食品与发酵工业 .2009.35(5) ：160163 5 郭敏亮,姜涌明.考马斯亮蓝显色液组分对蛋白质测定的影响. 生物化学与生物物理进展.1996.23(6) 生物化学实验技术课程作业 共 4 页5：558561 6中国知网 http:/
